WWW.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

 

Страницы:     | 1 | 2 || 4 | 5 |   ...   | 12 |

«ФГБОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия» «Научно-исследовательский инновационный центр микробиологии и биотехнологии» Ульяновская МОО «Ассоциация практикующих ...»

-- [ Страница 3 ] --

Установлено, что одним из механизмов, обусловливающих повышение синтеза ПАВ в присутствии Cu2+, является активация катионами меди алкангидроксилазы АлкБ типа у A. calcoaceticus ИМВ В-7241. Так, в Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии присутствии 0,01 и 0,05 мМ Cu2+ алкангидроксилазная активность штамма ИМВ В-7241 повышалась в 3 раза.

Поскольку увеличение синтеза ПАВ наблюдалось и при внесении Cu2+ в этанолсодержащую среду, мы предположили, что катионы меди могут также являться активаторами ключевых ферментов С2-метаболизма и биосинтеза ПАВ. Показано, что в присутствии Cu2+ увеличивалась активность как нитрозо-N,N-диметиланилин(НДМА)-зависимой алкогольдегидрогеназы, так и ферментов биосинтеза поверхностно-активных глико- ((ФЕП)-синтетаза) и аминолипидов (НАДФ+-зависимая глутаматдегидрогеназа) у бактерий A.

calcoaceticus ИМВ В-7241, растущих на этаноле.

Одним из способов удешевления технологий микробных ПАВ является использование дешевых ростовых субстратов, например, отходов других производств.

Показано, что А. calcoaceticus ИMВ В-7241 способен синтезировать ПАВ на таких субстратах, как жидкие парафины, пережаренное подсолнечное масло, меласса, но не на молочной сыворотке. Установлено, что максимальные показатели биосинтеза ПАВ были зафиксированы при культивировании А.

calcoaceticus ИMВ В-7241 на маслосодержащих субстратах: повышение условной концентрации ПАВ в 2,8–3,3 раза по сравнению с показателями на среде с этанолом. При использовании мелассы в качестве источника углерода наблюдали увеличение количества синтезированных ПАВ на 80 %, а жидких парафинов – на 40 % по сравнению с выращиванием на этанолсодержащей среде. Следует отметить, что при культивировании на всех исследуемых субстратах значение индекса эмульгирования практически не изменялось.

Таким образом, в результате проведенной работы установлена возможность интенсификации синтеза ПАВ в 1,9–3,5 раза при культивировании A. calcoaceticus ИМВ В-7241 на моно- и смешанных субстратах. Предложенные в данной работе подходы, в частности внесение экзогенных предшественников и культивирование продуцента на смеси ростовых субстратов, могут быть использованы для разработки не только технологий микробных ПАВ, но и других технологий микробного синтеза.

1. Banat I.M., Franzetti A., Gandolfi I., Bestetti G., Martinotti M.G., Fracchia L., Smyth T.J., Marchant R. Microbial biosurfactants production, application and future potential // Appl Microbiol Biotechnol. – 2010. – V. 87, № 2. – P. 427– 2. Gudia E.J., Teixeira J.A., Rodrigues L.R. Isolation and functional characterization of a biosurfactant produced by Lactobacillus paracasei // Colloids Surf B Biointerfaces. – 2010. – V. 76, N 1. – P. 298 – 304.

3. Mukherjee S., Das P., Sen R. Towards commercial production of microbial surfactants // Trends in Biotechnol. – 2006. –V. 24, N 11. – P. 509–515.

4. Pirog T. P., Antonyuk S.I., Karpenko E.V., Shevchuk T.A. The effect of the cultivation of Acinetobacter calcoaceticus K-4 strain on the synthesis of surfactants // Appl. Biochem. Microbiol. – 2009. – V. 45, N 3 – P. 304–310.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии 5. Rivardo F., Turner R.J., Allegrone G., Ceri H., Martinotti M.G. Anti-adhesion activity of two biosurfactants produced by Bacillus spp. prevents biofilm formation of human bacterial pathogens // Appl. Microbiol. Biotechnol. – 2009. – V. 83. – P. 541–553.

6. Thaniyavarn J., Chianguthai T., Sangvanish P., Roongsawang N., Washio K., Morikawa M., Thaniyavarn S. Production of sophorolipid biosurfactant by Pichia anomala // Biosci. Biotechnol. Biochem. – 2008. – V. 72, N 8. – P.

INTENSIFICATION OF BIOSURFACTANTS SYNTHESIS USED IN

PHARMACEUTICAL INDUSTRY AND MEDICINE

Parfenyuk S.A., Chebotarova K.V., Andruschenko Ya.V., Konon A.D.

The possibility of the intensification of biosurfactant synthesis by Acinetobacter calcoaceticus IMV B-7241 while cultivation on mono- and mixed substrates was shown.

It was shown that the addition of exogenous precursor of biosynthesis, copper cations in the exponential growth phase, the use of inoculum, grown to stationary growth phase on the medium with Cu2+, the cultivation on the mixture of growth substrates or industrial wastes resulted in 1,9-3,5 fold increasing concentration of surfactant synthesized by A. calcoaceticus IMV B-7241.

УДК 619:578.832.

ВЫЯВЛЕНИЕ BORDETELLA BRONCHISEPTICA МЕТОДОМ РЕАКЦИИ

НАРАСТАНИЯ ТИТРА ФАГА

Ушмарова Е.Г., Волкова А.А., 5 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: ассистент Семанина Е.Н.

Бордетеллез (инфекционный трахеобронхит, инфекционный ларинготрахеобронхит, «питомниковый кашель», «комплекс вольерного кашля – собачий кашель», «кашель псарен» или «собачий кашель») давно был признан как опасная инфекция дыхательного тракта собак. Первые сообщения об ассоциации бордетеллеза с другими болезнями собак были сделаны в начале 1900-х годов, сейчас бордетеллез расценивается как самостоятельная нозологическая единица. Максимальный интерес ученых к болезни приобрел в последние десятилетия. Бордетеллез распространен во всем мире и играет важную роль в патологии животных [2,3].

В зарубежной и отечественной ветеринарной и медицинской практике вопрос применения фагов бактерий Bordetella bronchiseptica с диагностической целью не рассматривался. В доступной нам литературе нет данных об индикации бордетелл методом реакции нарастания титра фага.



Реакция нарастания титра фага на основе бактеориофагов, позволяет существенно сократить сроки лабораторных анализов и проводить с высокой точностью индикацию бактерий [1].

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Вследствие актуальности проблемы целью нашей работы явилось апробирование реакции нарастания титра фага для индикации B.bronchiseptica.

Работа была выполнена в научно-исследовательском инновационном центре микробиологии и биотехнологии Ульяновской ГСХА. Для исследования была использована индикаторная культура (референс-штамм) B.bronchiseptica из коллекции музея НИИЦМБ Ульяновской УГСХА 8344, также был использован штамм фага B.br. – 7 УГСХА, выделенный методом индукции.

Реакцию нарастания титра фага ставили по методике В.Д. Тимакова и Д.М. Гольдфарба (1961), В.Я. Ганюшкина (1988).

Схема РНФ, разработанная В.Д. Тимаковым и Д.М. Гольдфарбом, заключается в следующем:

1. Превращение исследуемого материала в оптимальную среду для взаимодействия фага и клетки.

2. Добавление к субстрату определенного количества индикаторного фага, выраженного числом частиц.

3. Инкубация смеси (материал + фаг) при 37 С для реализации контакта фага с бактерий и последующего размножения в ней.

4. Отделение размножившегося фага от посторонней микрофлоры.

5. Количественный учет фага по методу Грациа.

Исследование с помощью РНФ проб физиологического раствора, искусственно контаминированного B.bronchiseptica Таблица 1 – Результат РНФ с фагом B.br. – 7 УГСХА при исследовании проб физиологического раствора, искусственно контаминированного культуры, Пробы физиологического раствора в объеме 5 мл вносили в колбы, содержащие по 50 мл МПБ и контаминировали бактериями B.bronchiseptica в концентрации от 101 до 105 м.к./мл. Брали колбу с физиологическим раствором, не контаминированным бактериями B.bronchiseptica.

Ставили реакцию как указано в схеме выше для каждого разведения культуры. На каждую исследуемую пробу брали три пробирки: № предназначена для опытной пробы, № 2 является контролем на свободный фаг, Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии № 3 – контроль титра индикаторного фага. Исследуемый материал разливали по 9 мл в пробирки № 1 и № 2, пробирка № 3 содержала 9 мл МПБ. Далее в пробирки № 1 и № 3 добавляли по 1 мл индикаторного фага в рабочем разведении. В пробирку № 2 – 1 мл МПБ. Параллельно ставили контроль стерильности сред. Все пробирки ставили в термостат при температуре 37 С на 7 часов.

По истечении 7 часов инкубации из пробирок брали по 0,25 мл исследуемого материала и вносили в пробирки с 4,5 МПБ (для получения в контроле титра индикаторного фага сосчитываемое количество колоний).

Пробирки обрабатывали хлороформом в течение 15 минут для удаления посторонней микрофлоры и подвергали дальнейшему исследованию методом агаровых слоев. Опытные чашки Петри помещали в термостат на 12 часов.

Выводы. По результатам проведенных исследований нами установлено, что увеличение титра фага B.br. – 7 УГСХА более чем в 5 раз произошло при концентрации 103 микробных клеток бордетелл в 1 мл физиологического раствора (табл. 1). Время исследований составило 26 часов. Таким образом, проведенные опыты подтверждают эффективность РНФ для обнаружения бордетелл в объектах внешней среды и у животных, при этом время исследования сокращается с 5 суток до 26 часов.

1. Гольдфарб Д.М. Бактериофагия. – М.: Медгиз., 1961. – 225 с.

2. Datz C. Bordetella Infections in Dogs and Cats / C. Datz // Pathogenesis, Clinical Signs, and Diagnosis. VetLearn. – 2003. – N 12.

3. Bordetella / R. Parton [et al.] // Topley & Wilson's Microbiology & Microbial Infections, Washington, DC, USA. – 2005. – Р. 1786-1817.

DETECTION BY THE BORDETELLA BRONCHISEPTICA IN THE

REACTION OF THE INCREASE OF THE TITER OF PHAGE

Ushmarova E.G., Volkova A.A., Semanina E.N.

The paper presents data on the possibility of primenneniya phage titer rise reaction to indicate the type of bacteria B.bronchiseptica.

УДК 619:

КУЛЬТУРАЛЬНО-МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА

ЛЕКАРСТВЕННОГО ГРИБА FLAMMULINA VELUTIPES НА СРЕДАХ

РАЗНОГО СОСТАВА

Танасийчук Б. В., 5 курс, факультет биотехнологии и экологии Научный руководитель: д.б.н., профессор Карпов А.В.

Национальный университет пищевых технологий, г. Киев (Украина) Перед человечеством, в наше время, стоят такие глобальные проблемы как: нехватка продуктов питания, загрязнение окружающей среды, ухудшение состояния здоровья. В решении этих актуальных проблем существенный вклад может внести промышленное культивирование съедобных грибов на остатках Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии сельского хозяйства [1]. Установлено, что белковый компонент грибов содержит все незаменимые аминокислоты, ненасыщенные жирные кислоты, витамины C, E, D, группы B, микроэлементы, в том числе железо и кобальт, которые являются дефицитными в питании человека, а также селен.

Уникальность биологических и биосинтетических свойств высших базидиальных грибов предопределяет их широкое применение в современной биотехнологии, фармакологии, биомедицине. Сегодня зарубежные фирмы изготавливают целый ряд лекарственных препаратов с противоопухолевыми, антивирусными, антисклеротическими и другими свойствами, которые получают при культивировании: вешенки обыкновенной (Pleurotus ostreatus), шийтаке (Lentinus edodes), опенка зимнего (Flammulina velutipes), обезьяньей головы (Hericium erinaceus) гриба-барана (Grifola frondosa).

Современные исследования грибов Flammulina velutipes позволили выделить из них биологически активные соединения различной химической природы и фармакологических свойств, а использование соответствующих тест-систем, результаты опытов на животных и клинические наблюдения показали, что препараты, полученные из этих видов грибов, имеют онкостатические, антибактериальные и другие ценные лечебно профилактические свойства. С опенка зимнего получен ряд веществ, которые проявляют противоопухолевую активность. Самые известные на сегодняшний день – это: бета-D глюкан фламмулин;

профламин.

Механизмы действия фламмулина и профламина:

1. активация специфического противоопухолевого клеточного иммунитета;

2. блокировка увеличение кровеносной системы опухоли;

3. восстановление нормальной запрограммированной гибели раковой клетки - апоптоза.

На основе гриба Flammulina velutipes производятся биологически активные добавки к пище в виде экстрактов. Как известно на сегодняшний день отходы агропромышленного комплекса не всегда находят применение, хотя и являются ценным сырьем. В нашей стране количество отходов лесного хозяйства и побочной продукции переработки растительного сельскохозяйственного сырья составляет около 50 млн. тонн в год. Поэтому большое внимание уделяется изучению биологии высших съедобных грибов.

Дереворазрушающие грибы Flammulina velutipes есть в этом плане одними из перспективных объектов, которые изучаются в микологи многих стран мира, так как вегетативный мицелий этого вида способен быстро расти в искусственных условиях культивирования, образовывать плодовые тела на относительно дешевых субстратах, а также способен синтезировать комплекс биологически активных веществ и имеет высокую пищевую ценность. В разных странах наблюдается существенная вариация в использовании субстратов при культивировании опенка зимнего. Так в Японии широко используют некоторые хвойные породы, а в странах основных импортеров кофе – субстраты на основе отходов ее производства [4]. В странах Европы отмечено использования субстратов из опилок липы, березы, фруктовых деревьев, соломы злаковых, шелуха подсолнуха с добавлением пшеничных отрубей [1].

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Опенок зимний входит в шестерку самых культивуемих грибов в мире. Несмотря на то, что Flammulina velutipes культивируют с 8 века, а мировое производство этого гриба в последнюю декаду прошлого века составило 285 тыс. тонн в год, промышленное культивирование зимнего опенка в Украине не развито из-за отсутствия высокопроизводительных штаммов и данных о составе субстратов, перспективных для их культивирования, следовательно поиск высокопродуктивных штаммов и подбор сред и определение оптимальных условий культивирования и является актуальностью данной работы.

Новизной работы является то, что на базе Института ботаники им. М.Г. Холодного НАН Украины проведены исследования штаммов базидиальных грибов Flammulina velutipes, которые выделены из территории Украины.

Опенок зимний (Flammulina velutipes) получил свое название благодаря тому, что он растет при температуре ниже 15 С. Опенок можно выращивать как интенсивным так и экстенсивным способом [2]. Однако экстенсивное выращивание опенка зимнего на древесных чурка не получило широкого распространения из-за низкой урожайности. Преимущества интенсивного способа культивирования опенка зимнего в управляемых условиях доказаны практикой мирового грибоводства. В природе Flammulina velutipes - гриб с короткой бархатной ножкой. Обычно его выращивают в прохладном помещении. Грибы с очень маленькими шапками и с длинными ножками получают путем повышения уровня углекислого газа и снижением уровня освещения. Эта необычная форма грибов делает их сбор довольно легким [1].

Нами было проведено выделение штаммов 2073, 2074, 2075, 2076 гриба F. velutipes в чистую культуру. Плодовые тела, собранны в период их массового появления, в начале октября, на территории Украины, а именно в Донецке. Штамм 1994 выделенный из плодовых тел, привезенных из Японии, который промышленно культивируется.

Проведенное исследование микроморфологии вегетативного мицелия культуры F. velutipes с использованием световой и электронной микроскопии позволило установить наличие у штаммов характерных для данных видов микроструктур: пряжек, конидиального спороношения, анастомозов.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Вегетативный мицелий F. velutipes представлен умеренно разветвленными, равномерно септированными гифами шириной 1,25 - 5,0 мкм.

Для выбора оптимальной питательной среды использовали: глюкозо пептон-дрожжевой агар (ГПДА);

сусло-агар (СА);

мальц экстракт агар (МЭА);

картофельно-глюкозный агар (КГА). В результате проведенных исследований было установлено, что из всех использованных питательных сред наиболее благоприятными для роста вегетативного мицелия оказались СА и МЭА. Морфология колоний всех исследованных штаммов F. velutipes на различных средах при температурах 22 ± 1 °С и 26 ± 1 °С была похожей, однако, скорость их роста отличалась. Цвет колоний белый или светло кремовый, мицелий плотный и густой, внешняя линия колонии гладкая. При инкубации культур в условиях повышенной температуры (32 ± 0,1 °С) наблюдалось незначительное опушение инокулята, однако вегетативный рост возобновлялся, когда их переносили в благоприятные условия культивирования (26 ± 0,1 °С). Температура 36 ± 0,1 °С оказалась критической для всех исследованных штаммов F. velutipes, так как рост вегетативного мицелия не восстанавливался при переносе в благоприятные условия и штаммы полностью теряли свою жизнеспособность. Проведенное комплексное исследование позволило установить, что температурой благоприятной для вегетативного роста мицелия F. velutipes есть – 26 ± 0,1 °С. Согласно полученным значениям радиальной скорости роста исследованные штаммы F. velutipes можно отнести к группе грибов растущих со средней скоростью роста, так как она не превышала 8,7 мм в сутки.

1. Бухало А.С., Бисько Н.А., Соломко Э.Ф., Билай В.Т., Митропольская Н.Ю. и др. Культивирование съедобных и лекарственных грибов / Киев, «Чернобыльинтеринформ», 2004. – 128 с.

2. Дудка И.А., Вассер С.П. Грибы, справочник миколога и грибника. – К.:

Изд-во «Наукова думка», 1987 – 535с.

3. Buchalo A., Mykchaylova O., Lomberg M. Microstructures of vegetative mycelium of macromycetes in pure cultures / M.G. Kholodny institute of Botany National Academy of Sciences of the Ukraine, Kiev, 2009. – 224 p.

4. Fan Leifa, Ashok Pandey, Carlos R. Soccol. Production of Flammulina velutipes on cofee Husk Coffe Spent-ground // Acta Biotech. – 2000. – 20, №1.

CULTURAL-MORPHOLOGICAL PROPERTIES OF MEDICINAL

MUSHROOMS FLAMMULINA VELUTIPESON IN ENVIRONMENTS OF

DIFFERENT COMPOSITION

Nowadays to humanity there are global concerns such as food shortages, pollution, deterioration of health. In solution of these problems industrial cultivation of edible mushrooms on the remains of agriculture can make a significant contribution.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии УДК 579.

РАЗРАБОТКА АНТИГЕННОГО БИОПРЕПАРАТА ДЛЯ

ДИАГНОСТИКИ ЛИСТЕРИОЗА В РЕАКЦИИ АГГЛЮТИНАЦИИ

факультет ветеринарной медицины, специальность ВСЭ.

Научный руководитель: ассистент кафедры МВЭ и ВСЭ, Хлынов Д.Н.

C момента первого описания листериоза у животных прошло уже более 100 лет. С каждым годом значение этой инфекции в патологии людей и животных возрастает.

В конце XX века листериоз приобрел особую опасность, связанную в первую очередь с контаминацией пищевых продуктов листериями. Исходя из этого листериоз получил название «пищевой инфекции» (И.А. Бакулов, Д.А.

Васильев, 1991).

Диагноз на листериоз устанавливают комплексно на основании данных эпизоотологического и эпидемиологического обследования, клинических признаков, патологических изменений и результатов лабораторных исследований (И.А. Бакулов, В.М. Котляров, Т.Е. Фирсова, и др., 2004).

В нашей стране принята бактериологическая диагностика листериоза и серодиагностическая схема, предусматривающая выявление антител с помощью традиционных серологических реакций: реакции агглютинации, реакции преципитации реакции непрямой гемагглютинации и реакции связывания комплемента (И.А. Бакулов, Д.А. Васильев и др. ).

Цели и задачи исследования. Целью наших исследований явилось получение компонентов для диагностики L. monocytogenes в реакции агглютинации.

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

получить специфические препараты антигенов и специфические сыворотки на лабораторных и восприимчивых животных;

отработать условия постановки реакции агглютинации для выявления антител к бактериям L. monocytogenes;

Получение антигенного препарата листерий Наработку бактериальной массы изолятов/штаммов проводили на мясопептонном агаре с добавлением 1% глицерина и 2% глюкозы. Суточную бульонную культуру по 5 см3 с примерной концентрацией 1106м. т/см вносили в матрас с питательной средой, расплодочный материал равномерно распределяли по поверхности агара путем покачивания матраса, оставляли при комнатной температуре на 15 мин., затем матрасы переворачивали агаром вверх, помещали в термостат с температурой 37°С на 24 часа и дополнительно подращивали 24 часа при температуре 20°С.

Микробиологическую чистоту выращенных культур оценивали визуально по характеру роста и микроскопией мазков, окрашенных по Граму.

Если культура не содержала посторонней микрофлоры, то ее смывали с поверхности агара физиологическим раствором. Полученный смыв культуры Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии листерий центрифугировали при 3000 об/мин в течение 30 минут.

Надосадочную жидкость отбрасывали, а осадок ресуспендировали в физиологическом растворе и вновь центрифугировали при указанном режиме (отмывание остатков питательной среды). Затем удаляли надосадочную жидкость и осадок ресуспендировали в стерильной дистиллированной воде при рН 7,2. Исходную бактериальную массу дезинтеграции на ультразвуковом гомогенизаторе Soniprep 150 (MSE, Англия).

Метод ультразвуковой дезинтеграции является одним из наиболее широко распространенных. Он позволяет получить дезинтеграты, в которых выявляются различные клеточные структуры и широкий спектр антигенов разной химической природы. Устойчивость микроорганизмов к ультразвуковой вибрации различна. Каждый вид требует отработки определенного режима.

При обычной ультразвуковой дезинтеграции микроорганизмов кавитация является основной причиной разрушения клеток. Объясняется это тем, что при возникновении кавитации происходит резкое перераспределение акустической энергии;

образующиеся вокруг кавитационных полостей градиенты давления и скорости жидкости на много порядков выше, чем в исходной акустической волне. При отсутствии же кавитации не происходит нарушения целостности микробной клетки из-за малости е размера (по сравнению с длиной ультразвуковой волны).

Образцы бактериальной суспензии озвучивали при амплитуде 14 мк.

Варьировали временем экспозиции до 10 мин. В течение всего времени из образцов делали мазки и окрашивали их по Граму для фиксации степени разрушения бактериальных клеток в озвучиваемой суспензии.

Был определн оптимальный режим разрушения бактериальной клетки (рис. 3.), заключающийся в следующем: бактериальную суспензию концентрацией 1 млрд микробных клеток в 1 мл дистиллированной воды с рН – 7,2 подвергали ультразвуковой обработке на дезинтеграторе Soniprep фирмы MSE (Англия) с амплитудой зонда – 14 мк, экспозицией обработки – мин, объм суспензии – 1 мл. В качестве охлаждающей смеси стакана дезинтегратора использовали смесь спирта со льдом. Эффективность разрушения листериозных клеток оценивали по данным световой микроскопии, а также по данным подсчта жизнеспособных клеток в исходной и разрушительной клеточной суспензии путм высева их на питательные среды.

Микроскопическое изучение «ультразвуковых» гомогенатов выявило заметное повреждение структур клеток Listeria monocytogenes. Таким образом, мы подобрали оптимальные условия получения дезинтеграта листерий.

Следующим этапом нашей работы, согласно поставленной задаче, стала постановка реакции агглютинации для выявления антител к бактериям L.

monocytogenes.

На часовом стекле сделали предварительное разведение (1:10;

1:100;

1:1000) полученного антигенного препарата с физиологическим раствором для определения самоагглютинации. В разведении 1:10 через 3 минуты происходила самоагглютинация антигена. В разведении 1: самоагглютинация отсутствовала длительное время (до 20 минут). В Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии разведении 1:1000 самоагглютинация не наступала на протяжение всего времени наблюдения.

Далее проводили постановку реакции агглютинации на часовом стекле. В качестве положительного контроля использовали коммерческую агглютинирующую листериозную сыворотку фирмы Difco. В качестве отрицательного контроля использовалась нормальная сыворотка КРС не содержащая антител к Listeria monocytogenes. На часовое стекло нанесли по мкл положительной сыворотки, нормальной сыворотки и физиологического раствора (для проверки самоагглютинации). Затем к каждому образцу добавили по 25 мкл полученного нами антигенного препарата. Каждую каплю перемешали стерильными палочками. После покачивали стекло в течение минут. В образце с положительной коммерческой сывороткой произошла заметная агглютинация в виде просветления жидкости и выпадения крупных хлопьев агглютината. В образце с нормальной сывороткой и физиологическим раствором изменений не наступило.

Таким образом, наработанный по указанному выше методу антигенный биопрепарат из листериозной бакмассы в дальнейшем может быть использован при постановке реакции агглютинации для диагностики листериоза.

1. http://www.epidemiolog.ru 2. http://www.rae.ru

DEVELOPMENT OF ANTIGEN BIOLOGICAL PRODUCTS FOR THE

DIAGNOSIS OF LISTERIOSIS IN THE AGGLUTINATION

The work is dedicated to the development of antigenic biological product for the diagnosis of listeriosis. We have gained from the antigen biologic listerioznoy bakmassy can later be used in the production of the agglutination test for the diagnosis of listeriosis.

УДК 619:

ПОКАЗАТЕЛИ МИКРОБНОЙ КОНТАМИНАЦИИ МОРОЖЕНОГО

Уба С.Г., 5 курс, биотехнологический факультет Научный руководитель: Викторов Д. А., научный сотрудник научно исследовательского инновационного центра микробиологии и биотехнологии Мороженое – это сладкий взбитый замороженный продукт, вырабатываемый из приготовляемых по специальным рецептурам жидких смесей, содержащих в определенных соотношениях составные части молока, плодов, ягод, овощей, сахарозу, стабилизаторы, в некоторых рецептурах яичные продукты, вкусовые и ароматические вещества. Во многих рецептурах предусматривается одновременное использование молочного и растительного сырья.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Молочные продукты могут содержать разнообразные микроорганизмы (микрококки, гнилостные бактерии, молочнокислые бактерии, бактерии группы кишечных палочек, дрожжи, плесени) в количестве от десятков до сотен тысяч в 1 мл [2].

Сахар и сахаристые вещества. При правильном хранении (в сухом помещении) они содержат незначительное количество микроорганизмов.

Однако при длительном хранении сахарные сиропы могут обсеменяться плесенями и осмофильными дрожжами.

Фрукты, ягоды, орехи. Они могут служить значительным источником микробного обсеменения мороженого, в особенности в тех случаях, когда их добавляют без термической обработки (фрукты) в пастеризованную смесь.

Стабилизаторы. В качестве стабилизаторов применяют пищевые агар, агароид, желатин. В них обнаруживают бактерий группы кишечных палочек, дрожжи и плесени, общее количество составляет десятки тысяч в 1 г.

Красящие вещества. Эти вещества могут служить источником микробного обсеменения, если их растворы приготовляют в антисанитарных условиях и длительное время хранят до использования.

Ароматические и вкусовые вещества. Они содержат незначительное количество микроорганизмов.

Из всех источников в смесь для мороженого поступает довольно разнообразный видовой состав микрофлоры, общее количество которой составляет от 400000 до 4 800 000 в 1 мл, коли-титр от 0,3 до 0,0003 [3].

Поскольку микрофлора мороженого в количественном и качественном отношении формируется в процессе его выработки, необходимо учитывать влияние основных технологических операций на микрофлору этого продукта.

1. Заготовка. Из тары, предварительно подвергшейся обработке, извлекают сырье, принимая меры для ограничения его обсемененности. Подготовку сырья, извлечение его из тары целесообразно производить в изолированном подготовительном помещении.

2. Пастеризация. Заготовленную смесь пастеризуют при 85°С в течение мин. Эффективность пастеризации колеблется от 99,99 до 99,84%.

Абсолютное количество бактерий, остающихся в смеси после пастеризации, зависит от исходной обсемененности и составляет от 20 до 1000 клеток в 1 мл. Видовой состав остаточной микрофлоры пастеризованной смеси следующий: энтерококки, микрококки, термофильные палочки, споровые бактерии. В смеси отсутствуют патогенные бактерии и бактерии группы кишечных палочек. Однако эта смесь в процессе производства может обсеменяться дополнительно.

3. Проблема предохранения смеси для мороженого от вторичного обсеменения после пастеризации в условиях производства мороженого весьма трудная: смесь проходит через большое количество трубопроводов, насосов, аппаратов, подвергается охлаждению, хранению, фризерованию, дозировке, фасовке, соприкасаясь при этом с оборудованием, инвентарем и руками человека. Поэтому очень большое Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии значение имеют санитарное состояние цехов, чистота рук и одежды производственного персонала, а также состояние его здоровья [1, 4].

4. В готовом мороженом количество микроорганизмов составляет тысячи или десятки тысяч в 1 мл, коли-титр более 0,3;

ОСТ 49-73–74 на мороженое допускает не более 100000 бактерий в 1 мл, коли-титр не В процессе хранения продукта при -20°С количество микроорганизмов постепенно снижается. Следовательно, основное бактериальное обсеменение мороженого происходит после пастеризации смеси в процессе ее обработки – до замораживания. Жизнедеятельность микроорганизмов в процессе производства мороженого, когда нарушаются режимы технологического процесса, может вызвать появление различных пороков продукта (неприятные привкусы, посторонние запахи) и даже стать причиной отравления энтеротоксином стафилококка. Кроме того, при низкой санитарной культуре производства не исключено попадание в мороженое патогенных микроорганизмов от людей-бактерионосителей.

Общая обсемененность должна составлять не более 1х105 клеток в 1 г, присутствие БГКП не допускается в 0,01-0,1 г, а золотистого стафилококка в г. Так же патогенные микроорганизмы не должны выявляться в 25 г мороженого.

Таблица 1 – Микробиологические показатели мороженого Группа продуктов Жидкие смеси для мягкого мороженого Сухие смеси для мягкого мороженого Надлежащие санитарно-гигиенические условия в производстве мороженого имеют первостепенное значение. Для обеспечения чистоты всех объектов необходимо пунктуально осуществлять мероприятия в соответствии с требованиями Санитарных правил для предприятий по изготовлению мороженого и Технологической инструкции по производству мороженого, в том числе ГОСТ Р 52175-2003 «Мороженое молочное, сливочное и пломбир.

Технические условия (с Изменением N 1)», ГОСТ 3622–68 «Молоко и Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии молочные продукты. Отбор проб и подготовка их к испытанию», ГОСТ 49-73– 74 на мороженое.

Микробиологический контроль заключается в проверке качества поступившего сырья, материалов, готовой продукции, а также в соблюдении технологических и санитарно-гигиенических требований производства. При производстве мороженого технологические примы направлены на уничтожение микроорганизмов или на создание условий неблагоприятных для их развития. Уничтожение микроорганизмов достигается применением высоких температур и замораживанием [1, 3].

При хранении мороженого микроорганизмы не развиваются, но могут сохранять в нм жизнеспособность в течение длительного времени. Поэтому при производстве мороженого особенно важно соблюдать санитарные режимы производства и регулярно соблюдать его микробиологический контроль, осуществлять санитарно-гигиенические нормы производства, проверять эффективность мойки и дезинфекции оборудования, инвентаря и упаковочных материалов, санитарно-гигиенического состояния одежды и рук рабочего персонала [3].

1. Вопросы микробиологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы. Сборник научных работ. Под ред. Васильева Д.А. – Ульяновск, УГСХА, 1998. – 210 с.

2. ГОСТ 3622–68 Молоко и молочные продукты. Отбор проб и подготовка 3. ГОСТ Р 52175-2003 Мороженое молочное, сливочное и пломбир.

Технические условия (с Изменением N 1) 4. Дьяченко П. Ф., Коваленко С. Технология молока и молочных продуктов.- М.: Пищевая промышленность, 1985.-446с.

5. Корнелаева Р.П., Степаненко П.П., Павлова Е.В. Санитарная микробиология сырья и продуктов животного происхождения: Учебник для ВУЗов. – М., 2006. – 409с.

MICROBIAL CONTAMINATION INDICATORS OF ICE CREAM

The article presents the assessment of indicators of microbial contamination ice cream.

УДК 619:

МИКРОФЛОРА ТЕЛА ЧЕЛОВЕКА

Ульчина А.А., 1 курс, факультет ветеринарной медицины Научные руководители: Пульчеровская Л.П., Золотухин С.Н.

В человеческом организме микрофлора поселяется на его поверхности (на кожных покровах) или во внутренних полостях (на слизистых оболочках Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии ротовой полости, в верхних дыхательных путях, желудочно-кишечном тракте – ЖКТ – и в мочеполовой системе). Здесь микроорганизмы размножаются, но их численность постоянно меняется. В здоровом состоянии микроорганизмы не обнаруживаются в легких, матке, крови, ликворе (спинно-мозговой жидкости).

Обнаружение микроорганизмов в этих органах свидетельствует об инфекционном процессе. Причину инфекции можно установить, анализируя состояние крови, спинно-мозговой и синовиальной жидкости, так как их течение в организме позволяет выявить направленность и распространение инфекционного процесса.

Микрофлора тела человека делится на:

резидентную (постоянно присутствующую в организме);

транзиторную (временную).

Ее формирование у новорожденных начинается с проникновения на кожные покровы и слизистые оболочки верхних дыхательных путей. Уже спустя 3 месяца состав и численность микрофлоры тела ребенка практически не отличаются от взрослого человека.

На поверхность кожи микроорганизмы попадают из внешней среды. В то же время микрофлора кожи участвует в активном загрязнении окружающих объектов, что происходит вследствие постоянного, естественного шелушения кожных покровов. На 1 см2 кожи обычно обнаруживается от 1000 до клеток микроорганизмов (стафилококков, стрептококков, дрожжей и др.), что физиологически регулируется присутствием на кожных покровах факторов неспецифической защиты и иммунитета. Важнейшим фактором, способствующим поддержанию численности кожной микрофлоры в норме, является ее чистота. При соблюдении элементарных правил гигиены количество бактериальных клеток может снизиться на 90 %. При повышенной влажности кожи и вследствие усиленного потоотделения численность микроорганизмов может возрасти до миллиона, особенно на фоне грязи.

Дыхательная система заселяется микроорганизмами с первым актом дыхания при рождении. Так как полости носа и рта имеют сообщение, то и заселяются они однотипными микроорганизмами (стафилококками, стрептококками, менингококками, энтеробактериями и др.). В норме легкие, трахея и бронхи не содержат микроорганизмов, но при их контаминации патогенами в ослабленном организме может развиться инфекционный процесс, в частности человек может заболеть трахеитом, бронхитом, пневмонией и другими опасными заболеваниями. С возрастом защитные свойства организма могут возрасти вследствие совершенствования иммунной системы, поэтому снижается вероятность заболевания и передачи инфекции.

Верхние отделы мочеполовой системы стерильны. В то же время нижние и наружные отделы мочеполовой системы обычно заселяют следующие представители микробного царства:

нижние отделы – стафилококки (Staphylococcus epidermidis), негемолитические стрептококки, дифтероиды, микроскопические грибы родов Candida, Torulopsis, Geotrichum;

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии наружные отделы – микобактерии (типичный представитель – Mycobacterium smegmatis).

контаминируется бактероидами, лактобактериями, клостридиями, стрептококками. Из последних наиболее опасен для новорожденных Streptococcus agalactae, обнаруживаемый во влагалище у 15–20 % беременных женщин.

Практически все отделы пищеварительной системы заселены микроорганизмами. Их заселение происходит в течение первых дней жизни ребенка и поддерживается на протяжении всей жизни на определенном уровне.

Рассмотрим микробиологическое состояние каждого из отделов ЖКТ в отдельности.

микроорганизмами происходит в первые дни жизни, начинаясь при прохождении плода по родовым путям. Уже спустя 2–7 суток первоначальная микрофлора (энтеробактерии, стафилококки, микрококки) замещается на бактерии, обитающие в ротовой полости матери и персонала роддома.

В ротовой полости на микроорганизмы воздействует слюна, содержащая антимикробные вещества (лизоцим, иммуноглобулины). Кроме того, слюна способна механически смыть микробы. Тем не менее в самых укромных местах ротовой полости (десневых карманах, межзубных щелях) обитает большое количество микроорганизмов – резидентов, относящихся к различным систематическим группам. Среди них: актиномицеты, стрептококки, спирохеты, лактобактерии, простейшие, дрожжи рода Candida. Через ротовую полость в пищеварительный тракт проникают и не свойственные организму человека микроорганизмы (транзиторные виды), среди которых обнаруживается немалое количество возбудителей инфекционных аболеваний.

По данным разных авторов, количество бактерий в слюне колеблется от 43 млн.

до 5,5 млрд. в 1 мл, т.е. в среднем 750 млн. в 1 мл.

Микробный состав полости рта здоровых людей представлен в таблице 1.

Таблица 1 – Микробный пейзаж полости рта здоровых лиц Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Так как желудочный сок имеет низкое значение рН, неблагоприятное для большинства бактерий, в желудке в основном способны обитать молочнокислые бактерии и дрожжи. В норме у здоровых людей их количество составляет 103/мл. При язвенной болезни желудка в нем появляются изогнутые формы бактерий Helicobacter pylori, которые считаются или самостоятельным видом, или морфологическим изменением резидентной микрофлоры.

Желудочно-кишечный тракт новорожденных содержит незначительное количество бактерий, проникших в организм ребенка по родовым путям. У естественно вскармливаемых малышей в кишечнике доминирует Bacillus bifidum, а у «искусственников» – Bacillus acidophylum. Кроме того, в кишечнике первых обнаруживаются стафилококки, а в кишечнике вторых – клостридии. В то же время в кишечнике обеих групп детей обычно присутствуют энтерококки и E. coli.

В верхнем отделе кишечника – тонкой кишке – микроорганизмов насчитывается 103 КОЕ/мл, как в желудке. Здесь обычно обнаруживаются стрептококки, дрожжи рода Candida и молочнокислые бактерии. Напротив, нижние отделы кишечника, особенно толстая кишка, содержат очень много микроорганизмов (1012 КОЕ/г фекалий) в сравнении с другими полостями, поэтому эти отделы принято считать естественным резервуаром бактерий всего человеческого организма.

Около 95 % всех видов микроорганизмов, обитающих в кишечнике, – облигатные анаэробы. Среди представителей анаэробной микрофлоры кишечника основную часть (до 90 %) составляют неподвижные G+ неустойчивостью к кислотам, и G- полиморфные бактероиды, у которых выделяют кокковые и ветвящиеся формы. Основной вид вызываемых этими микроорганизмами заболеваний – всевозможные абсцессы, развивающиеся в различных отделах желудочно-кишечного тракта, в дыхательной и мочеполовой системах.

В кишечнике широко представлены различные микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae (Proteus vulgaris, Clostridium perfringens и другие представители СПМ). Во всех отделах кишечника можно обнаружить, хотя и в незначительном количестве, микроорганизмы, относящиеся к различным систематическим группам: пропионовые и фузобактерии, стафилококки, дрожжеподобные грибы, вирусы, фаги и др.

Особое значение в обеспечении нормальной жизнедеятельности человеческого организма имеет микрофлора толстой кишки. Ее роль заключается:

в обеспечении антагонистической деятельности, связанной с продуцированием большого количества веществ (антибиотиков, кислот – молочной, пропионовой, уксусной, спиртов и прочих продуктов брожения, свойственного представителям микробоценоза, населяющего толстую кишку), отрицательно действующих на гнилостную микрофлору;

обеспечение водно-солевого обмена;

регуляции газового состава кишечника;

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии участие в процессах метаболизма – в обмене углеводов, жирных кислот, холестерина, белков, нуклеиновых кислот;

водорастворимых, относящихся к группе В (тиамин, рибофлавин, никотиновая, пантотеновая и фолиевая кислоты);

обеспечение детоксикации различных метаболитов, вырабатываемых организмом человека и поступающих в него извне. Эта функция микрофлоры толстого кишечника дополняет детоксикационную функцию печени. В то же время существуют примеры отрицательного действия ферментов, выделяемых микрофлорой толстой кишки, на организм человека. Происходит это чаще всего при неправильном использовании веществ, применяемых в лекарственных целях. Оказалось, что искусственный подсластитель цикламат под воздействием фермента сульфатазы способен конвертироваться в циклогексамин и далее всасываться эпителием мочевого пузыря, вызывая развитие онкозаболеваний;

образование биологической пленки, так называемого гликокаликса, включающего экзополисахариды микроорганизмов и способного защитить от неблагоприятных воздействий слизистую оболочку кишечника с населяющими ее микроорганизмами;

участие в колонизационной резистентности, представляющей собой совокупность защитных факторов организма, сформированных под влиянием антагонизма анаэробной микрофлоры кишечника в отношении аэробных видов. Благодаря колонизационной резистентности посторонние микроорганизмы не способны к активной колонизации кишечника. Если это все же случается, во врачебной практике применяют прием селективной деконтаминации – избирательного удаления из пищеварительного тракта аэробных бактерий и грибов. С этой целью чаще всего назначают избирательно действующие антибиотики, например, нистатин, ванкомицин, гентамицин. Взаимное действие антибиотиков иногда усиливают, назначая их вместе.

Исходя из вышеизложенного, целью наших исследований явилось изучение поверхностной микрофлоры кожи и микробного пейзажа слюны человека. С этой целью мы отобрали пробы и провели посев на элективные питательные среды.

В исследуемых объектах мы определяли присутствие следующих родов микроорганизмов: кишечной палочки, сальмонелл, стафилококков, энтерококков, бацилл, молочнокислых бактерий и в слюне дополнительно определяли - присутствие анаэробов, БГКП и ОМЧ.

Результаты исследований представлены в таблице 2.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Таблица 2 – Результаты микробиологических исследований Сальмонеллы Молочнокислые бактерии Медицинская и санитарная микробиология: учеб. пособие/ А.А.

Воробьев, Ю.С.Кривошеин, В.П.Широбоков.- 3-е изд., стер. – М.:

Академия, 2008. – 464 с.

Мудрецова-Висс К.А., Кудряшова А.А., Дедюхина В.П. Микробиология, санитария и гигиена: Учебник для вузов. – М.: Деловая литература, 2001.

Санитарная микробиология /Н.Б. Билетова, Р.П. Корнелаева, Л.Г.

Кострикова и др. – М.: Пищевая промышленность, 2005.

Черкес Ф.К., Богоявленская Л.Б., Бельская Н.А. Микробиология / под ред.

Ф.К. Черкес. – М.: Медицина, 1987. – 512с.

Шкатова Е.Ю. и др. Инфекционная безопасность в ЛПУ.: Учеб. пособие. Ростов н/Д: Феникс, 2008. – 235 с.

MICROFLORA OF THE HUMAN BODY

The article presents data bacteriological flora of the human body.

УДК 619:

ИССЛЕДОВАНИЕ САНИТАРНОГО СОСТОЯНИЯ ВОЗДУХА В

ПОМЕЩЕНИЯХ ОБЩЕЖИТИЯ

Шабулкина Е., Шкаликова М., 2 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: ассистент кафедры МВЭ и ВСЭ, Хлынов Д.Н.

Качество воздушной среды определяется степенью е загрязннности посторонними химическими веществами. Эти вещества поступают в воздушную среду в результате работы промышленных предприятий, Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии транспорта и из других источников, а затем через вентиляционные системы зданий попадают внутрь жилых помещений. Здесь они смешиваются и вступают в реакции с веществам, образующимися в процессе жизнедеятельности организма человека, работы бытовых приборов, выделений из различных предметов, мебели, ковров. В итоге качество воздушной среды жилых помещений может оказаться значительно хуже, чем городского атмосферного воздуха. Как правило, в воздухе жилых и производственных помещений постоянно присутствует бытовая пыль, оксиды углерода, азота, серы, озон, радон, компоненты табачного дыма, десятки различных летучих органических соединений (ЛОС), микроорганизмы. Данные о составе микрофлоры воздуха закрытых помещений весьма актуальны, так как в воздухе почти всегда присутствуют патогенные организмы, способные вызвать различные заболевания при высокой концентрации и прочих сопутствующих условиях.

Оценка качества воздушной среды в закрытом помещении как проблема на первый взгляд может показаться второстепенной и даже надуманной.

Действительно, мы вс больше узнаем о состоянии среды обитания на планете, о факторах, определяющих степень е загрязнения, как на глобальном, так и на региональном уровне. Однако воздухом мы дышим круглосуточно и большую часть времени проводим в закрытых помещениях, где и может сформироваться неблагоприятная в экологическом отношении среда, негативно влияющая на самочувствие и здоровье человека.

Микрофлора воздуха закрытых помещений более однообразна и относительно стабильна. Среди микроорганизмов доминируют обитатели носоглотки человека, в том числе патогенные виды, попадающие в воздух при кашле, чихании или разговоре. Основной источник загрязнения воздуха патогенными видами – бактерионосители. Уровень микробного загрязнения зависит главным образом от плотности заселения, активности движения людей, санитарного состояния помещения, в том числе пылевой загрязннности, вентиляции, частоты проветривания, способа уборки, степени освещнности и других условий. Так, регулярные проветривания и влажная уборка помещений снижает обсеменнность воздуха в 30 раз (по сравнению с контрольными помещениями). Самоочищения воздуха закрытых помещений не происходит.

В отличие от воздуха закрытых помещений, в атмосферном воздухе постоянно происходят процессы самоочищения. Этот процесс происходит благодаря осадкам, инсоляции, температурным воздействиям и другим факторам. В свою очередь атмосферный воздух сам по себе – фактор очищения воздуха жилых помещений.

Цель: провести исследование воздуха в помещениях общежития седиментационным методом.

Задачи: 1) определить количество микроорганизмов, находящихся в 1 м воздуха в помещениях: 1 этаж, 2 этаж, 3 этаж, 4 этаж, 5 этаж, «курящая»

комната, комната с содержанием кошки, «грязная» комната, кухня, туалет, умывальник, душ.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии 2) провести первичную идентификацию выделенных культур – описание колоний микроорганизмов и окраска мазков по Граму.

Материалы и методы Микробиологическое исследование воздуха проводили в соответствии с методическими указаниями по седиментационному методу, описанному в следующей литературе: «Микробиологические методы исследования» под ред.

Лабинской, второе издание,1978 г.

Данные исследования включают следующие этапы работы: подготовка лабораторной посуды питательных сред, взятие проб воздуха для исследования, учет роста на чашках Петри с питательными средами, микроскопирование выявленных микроорганизмов, первичная идентификация выделенных культур.

Бактериологические питательные среды.

Ход исследования: В атмосфере содержатся как сапрофитные, так и паразитические (патогенные) виды бактерий. Источником е обогащения различными микроорганизмами служат пылевые частицы, дыхательные пути человека и животных. В воздухе преобладают спороносные бактерии, плесневые грибы, актиномицеты, дрожжи как наиболее устойчивые к высыханию и пигментные виды, устойчивые к воздействию ультрафиолетовых лучей. Чашку Петри с агаром (питательная среда) поставили на горизонтальные поверхности и открыли крышку на 5 минут для осаждения бактерий из воздуха комнат. Затем чашки закрыли и поставили на хранение в термостат при 37°C.

Учет проводился через 24 часа. Необходимо было провести подсчт количества колоний и определить, сколько видов колоний в каждой чашке Петри.

Первичная идентификация выделенных культур микроорганизмов Для первичной идентификации выделенных культур микроорганизмов было проведено описание их колоний на плотных питательных средах ( МПА), а так же приготовление мазка и окраска его по методу Грама.

микроорганизмов, мы получили наибольшее количество колоний в чашках Петри под №7, №10, №12, это комната с домашним животным, туалет и душевая. При микроскопировании колоний из чашки Петри №7 были выявлены грам+ кокки и грам- палочки. При микроскопировании колоний из чашек Петри №10 и №12 были обнаружены грам+ кокки.

Заключение. В помещениях современных квартир, офисов, компьютерных центрах, аудиториях и других местах длительного пребывания людей человек вынужден находиться в условиях искусственного микроклимата. При этом средой, которая теряет свои естественные свойства постоянного обновления, является воздух.

В воздухе помещений существует та же смесь химических веществ, что и снаружи. Отличие заключается в их концентрации и недостатке средств очистки воздуха.

Химический состав воздуха внутри помещений формируется не только за счт естественных и антропогенных факторов, но и в результате различных химических превращений с участием загрязнителей. Для того, чтобы химические вещества стали опасными для здоровья, их доза должна превысить Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии предельно допустимый уровень. Эффективная вентиляция, использование воздушных очистителей, постоянный объм воздуха, выращивание растений в домашних условиях и офисе – вс это безусловно способствует очищению воздушной среды. Растения хорошо поглощают формальдегид и другие загрязняющие вещества в помещениях. Однако, по результатам исследования воздуха закрытого помещения, видно, что не только растения необходимо использовать для очистки воздуха. Для снижения микробной обсеменнности воздуха следует проводить влажную уборку не реже 2 х раз в неделю и по возможности проветривать помещения 2-3 раза в сутки.

1. http://smikro.ru 2. http://micro-biolog.ru/sanitarnaya-ocenka-vozduxa

INVESTIGATION OF SANITATION OF AIR SPACE HOSTELS

Shabuikina E., Shkalikova M., Khlinov D.N.

The work is devoted to assessing the health of indoor air of residential premises. To reduce microbial contamination of the air should not only use the plants, but also to carry out wet cleaning, at least two times a week and possibly ventilate the room 2-3 times a day.

УДК 619:

САНИТАРНО-БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

СМЫВОВ С БАНОК ИЗ-ПОД НАПИТКОВ

А.А. Щербина, Е.А. Брендюк, К.М. Курбанова, 3 курс, факультет ветеринарной медицины.

Научный руководитель: к.б.н., ст. преподаватель Н.П. Журавская Верминофобия – страх заразиться микробами, бактериями, болезнями, червями, насекомыми. Слово из терминологии современной психиатрии, а вот фобия – не новая, родом из детства. Когда-то нас пугали страшилками о микробах… и испугали. Теперь для некоторых людей поход в общественный туалет или нажатие на кнопку в лифте граничит с паранойей. Стоит ли так бояться? Ежедневно мы сталкиваемся с миллионами бактериями, причем часть из них вызывает смертельно опасные заболевания. На Земле насчитывается более 10 тысяч видов разных типов бактерий. В 1 грамме грязи их содержится около 1 миллиарда. Суммарный вес бактерий, живущих в организме взрослого человека, составляет около 2 килограммов [2, 3].

Цель исследования – провести оценку бактериальной загрязненности смывов с поверхности банок из-под газированных напитков.

Задачи исследования 1. Определить ОМЧ в 1 мл смывов.

2. Определить качественный состав микрофлоры в смывах.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Материалы и методы В работе использовали: 1,5% мясопептонный агар;

0,9% р-р хлорида натрия (физраствор);

6,5% солевой агар;

агар Эндо.

Объектами исследования являлись смывы с алюминиевых банок из-под напитков. При выполнении работы пользовались методами санитарной микробиологии и бактериологии [1].

Результаты исследования Для получения смывов пользовались стерильными ватными тампонами.

В день смыва был приготовлен штатив с пробирками, в которых была стерильная вода. Смоченными ватными тампонами протиралась поверхность банок. Тампон тщательно в течение 2–3 мин промывали, получая исходное разведение. Из него готовили ряд последовательных десятикратных разведений. Опыт проводили 3 раза.

По 1 мл разведений вносили в стерильные чашки Петри, заливали 10- мл 1,5% мясопептонного агара. Посевы выдерживали 24 ч при температуре °С, после чего производили подсчет выросших колоний.

Учет результатов 1. Установили количество микробов в 1 мл исходного разведения смыва.

Для этого подсчитали число колоний на агаре в чашке и полученную величину умножили на степень разведения смыва.

2. Определили кол-во микробов в 10 мл смыва, соответствующее общему числу микробов, находящихся на той площади, с которой производился смыв. Для этого величину, соответствующую кол-ву микробов в 1 мл смыва, умножают на 10.

Подсчет выросших колоний проводили методом деления чашки Петри на 4 сектора и подсчета выросших колоний в каждом секторе. Результаты исследования представлены в таблице.

Таблица 1 – Количество микроорганизмов в 1 мл смыва Количество колоний Количество Количество Количество опыта По показателям общей обсемененности: санитарное состояние поверхности считается отличным, если ОМЧ на 1см2 не превышает 100, хорошим - при микробном числе от 100 до 1000, удовлетворительным более 1000, плохим - более 10000 [4].

По данным таблицы установлено, что количество микробов на 1х1 см.

поверхности банок из-под напитков по первой банке - 1125 и по второй – 625.

Делаем вывод, что санитарное состояние первой банки - удовлетворительное, а по второй банке – хорошее.

Проведенные нами исследования дают информацию о том, какое количество бактерий содержится на таких безобидных вещах, как алюминиевые Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии банки из-под напитков. Количество бактерий обнаруженных на банках не так много, чтобы вызвать инфекционные заболевания, но меры гигиены лучше соблюдать. Вовсе не обязательно мыть банки перед употреблением достаточно использовать одноразовые трубочки-соломинки или же пластиковые стаканы.

1. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология, 2. Лабинская А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. Изд. 4-е, перераб. и доп. М., «Медицина», 1978.

3. Позднеев О.К. Медицинская микробиология учебник для вузов, 2002.

4. Соловьев А.А. Медицинская и санитарная микробиология. 2003.

SANITARY-BACTERIOLOGICAL EXAMINATION OF

SWABS WITH DRINKS CANS

Brendyuk E.A., Kurbanovа K.K., Shcherbina А.А., Zhuravskaya N.P.

This article contains information about the methods for determining bacterial contamination of swabs from the cans of drinks.

УДК 579.67:664.42.2:664.66.022.39:663.444.

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ

ХМЕЛЕВОГО ЭКСТРАКТА И ЗАКВАСКИ ДЛЯ ВЫПЕЧКИ ХЛЕБА

Лунева А.А. 5 курс, факультет ветеринарной медицины и биотехнологии Научный руководитель: профессор, д.м.н. Назарова Л.С.

Бактерии и грибы попадают в муку в процессе помола зерна и вызывают ее порчу, а следовательно, снижается и потребительское качество хлеба. В сухую и жаркую погоду, которая типична для Поволжья, на зерне преобладают бациллы различных видов. Они сохраняются в зерне и соответственно в муке при сухом и мокром способе очистки зерна и вызывают тягучую или картофельную болезнь хлеба. Возбудителями этой болезни являются Bacillus и Bacillus mesentericus. Споры этих бацилл обладают высокой subtilis термоустойчивастью и не погибают при выпечке хлеба. Пораженный хлеб теряет свой естественный вкус и аромат, мякиш становится липким, при разломе наблюдаются слизистые, тянущиеся нити. Хлеб с признаками картофельной болезни может вызвать нарушение функций желудочно кишечного тракта. Одним из способов борьбы с картофельной болезнью является хмелевая закваска [4].

Хмель с незапамятных времен используется для приготовления закваски и выпечки хлеба. Однако в промышленности эта закваска пока не применяется, хотя и имеется целый ряд научных работ, доказывающих положительные действия экстрактов хмеля на бациллы и приобретение своеобразного аромата домашнего хлеба.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии В нашей стране имеется много сортов различного хлеба, но, как пишет Ч.

Бэггз, в современном хлебопечении наметилась тенденция к возрождению старых традиций, поскольку в современном обществе хороший хлеб является символом хорошей жизни. Человеку хочется чувствовать аромат и вкус «домашнего хлеба». Именно к такому хлебу относится хлеб на хмелевой закваски. В литературе приводятся сведения о том, что на бациллы действуют органические кислоты хмелевого экстракта [4]. Однако нельзя исключить, что определенную роль играет микрофлора хмеля. Сведения об этом в доступных литературных источников отсутствуют. Учитывая выше описанное целью настоящей работы было изучение микроорганизмов, остающихся в хмелевом экстракте, и их влияние на Bacillus subtilis.

1. Выделение из хмелевого экстракта микроорганизмов и их идентификация;

2. Определение влияния нативного и автоклавированного хмелевого экстракта на Bacillus subtilis;

3. Изучения микроорганизмов, имеющих в хмелевой закваске.

Материалы и методы Методика приготовления хмелевого экстракта включала кипячение в течение 40 минут навеси хмеля в дистиллированной воде в соотношении 1:100.



Страницы:     | 1 | 2 || 4 | 5 |   ...   | 12 |
 



Похожие материалы:

«РЕСПУБЛИКА АРМЕНИЯ МИНИСТЕРСТВО ОХРАНЫ ПРИРОДЫ НАЦИОНАЛЬНАЯ ПРОГРАММА ДЕЙСТВИЙ ПО БОРЬБЕ С ОПУСТЫНИВАНИЕМ В АРМЕНИИ ЕРЕВАН 2002 НАЦИОНАЛЬНАЯ ПРОГРАММА ДЕЙСТВИЙ ПО БОРЬБЕ С ОПУСТЫНИВАНИЕМ В АРМЕНИИ Руководитель Программы: Вардеванян Ашот Ответственный редактор: Балоян Самвел Консультант: Дарбинян Нуне Министерство охраны природы Республики Армения выражает глубокую благодарность Программе окружающей среды Организации Объединенных Наций (UNEP), Секретариату Конвенции ООН “По борьбе с ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ ГЛАВНОЕ УПРАВЛЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ, НАУКИ И КАДРОВ Учреждение образования БЕЛОРУССКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ИНТЕНСИВНОГО РАЗВИТИЯ ЖИВОТНОВОДСТВА Сборник научных трудов Выпуск 15 В двух частях Часть 1 Горки БГСХА 2012 УДК 631.151.2:636 ББК 65.325.2 А43 Редакционная коллегия: А. П. Курдеко (гл. редактор), Н. И. Гавриченко (зам. гл. редактора), Е. Л. Микулич (зам. гл. редактора), Р. П. ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА Факультет электрификации и энергообеспечения АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ЭНЕРГЕТИКИ АПК Материалы III Международной научно-практической конференции САРАТОВ 2012 УДК 338.436.33:620.9 ББК 31:65.32 Актуальные проблемы энергетики АПК: Материалы III Международной научно практической ...»

«А.Я. Ала РОЛЬ ГОРИЗОНТАЛЬНОГО ПЕРЕНОСА ГЕНОВ В СЕЛЕКЦИИ A. Ya. Ala ROLE OF HORISONTAL TRANSFER OF GENES IN SELECTION Российская академия сельскохозяйственных наук Russian academy of agricultural sciences Всероссийский научно-исследовательский институт сои All-Russian Soybean Research Institute А.Я. Ала A. Ya. Ala РОЛЬ ГОРИЗОНТАЛЬНОГО ПЕРЕНОСА ГЕНОВ В СЕЛЕКЦИИ ROLE OF HORISONTAL TRANSFER OF GENES IN SELECTION Благовещенск, ПКИ Зея, Blagoveshchensk Zeya, УДК 633.853.52:631. ББК 41. А Ала А.Я. ...»

«Алтайский государственный технический университет им. И.И. Ползунова Сельский туристский бизнес в Алтайском крае Учебное пособие Барнаул • 2009 УДК 379.85 ББК 65.9(2Рос– 4Алт) 497.58 С 279 Авторы: А.Н. Дунец, В.В. Исаев, Н.В. Биттер, Л.И. Донскова, В.С. Ревякин, В.С. Бовтун, Т.Г. Петракова, О.Ю. Герасимова, Е.Л. Панин, А.В. Косицына Рецензент кандидат педагогических наук, доцент С.А. Гокк С 279 Сельский туристский бизнес в Алтайском крае : учебное пособие / под ред. А.Н. Дунца. – Барнаул : ...»

«Василий Скакун ВСЁ, ЧТО БЫЛО НЕ СО МНОЙ, ПОМНЮ. Ставрополь АГРУС 2013 УДК 82-3 ББК 84(2Рос=Рус)6 С42 Скакун, В. Всё, что было не со мной, помню. / Василий Ска- С42 кун. – Ставрополь : АГРУС Ставропольского гос. аграрного ун-та, 2013. – 224 с. ISBN 978-5-9596-0870-5 Каждый здравомыслящий человек, обозревая вокруг себя людей с абсолютно разными чертами характера, рано или поздно просто обязан прийти к разгадке этой тайны. Мы жи вём множество жизней, накапливая в каждой тот или иной опыт – ...»

«Федеральное агентство по образованию Российской Федерации Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Ивановский государственный химико-технологический университет Т.К. Акаева, С.Н. Петрова Основы химии и технологии получения и переработки жиров Часть 1. Технология получения растительных масел Учебное пособие Иваново 2007 1 УДК 664.34.002(075) Акаева Т.К., Петрова С.Н. Основы химии и технологии получения и переработки жиров. Ч.1. Технология получения ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ КУБАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Кафедра общей биологии и экологии И.С. Белюченко, О.А. Мельник СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ ЭКОЛОГИЯ (учебное пособие) Краснодар, 2010 УДК 631.95 ББК 28.081 Б 43 Белюченко И.С., Мельник О.А. Сельскохозяйственная экология. Учебное пособие. – Краснодар: Изд-во КГАУ, 2010. 297 с. Рассматриваются основные проблемы сельскохозяйствен ной (агроландшафтной) экологии: динамика развития окульту ренных ландшафтов, ...»

«А.М. Дербенцева АГРОХИМИЯ Курс лекций Владивосток 2006 1 Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное агентство по образованию Дальневосточный государственный университет Академия экологии, морской биологии и биотехнологии Кафедра почвоведения и экологии почв АГРОХИМИЯ Курс лекций Составитель Дербенцева А.М., профессор кафедры почвоведения и экологии почв Владивосток Издательство Дальневосточного университета 2006 2 ББК 40. С Научный редактор В.И. Голов, д.б.н., профессор ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РЕСПУБЛИКИ БАШКОРТОСТАН ФГОУ ВПО БАШКИРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ГНУ БАШКИРСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССЕЛЬХОЗАКАДЕМИИ ОАО БАШКИРСКАЯ ВЫСТАВОЧНАЯ КОМПАНИЯ НАУЧНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ИННОВАЦИОННОГО РАЗВИТИЯ АПК Часть III НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ ИНЖЕНЕРНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ ИННОВАЦИОННОГО РАЗВИТИЯ АПК АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ ЭНЕРГЕТИКИ В АГРОПРОМЫШЛЕННОМ КОМПЛЕКСЕ ...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Мичуринский государственный аграрный университет А.В. НИКИТИН, В.В. ЩЕРБАКОВ СТРАХОВАНИЕ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ КУЛЬТУР С ГОСУДАРСТВЕННОЙ ПОДДЕРЖКОЙ Мичуринск - наук оград РФ 2006 1 PDF created with FinePrint pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com УДК Печатается по решению Методического совета ББК Мичуринского государственного аграрного ...»

«РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова Шестая конференция молодых сотрудников и аспирантов института АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ЭКОЛОГИИ И ЭВОЛЮЦИИ В ИССЛЕДОВАНИЯХ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ Материалы конференции 23–25 апреля 2014 г. Товарищество научных изданий КМК Москва 2014 Актуальные проблемы экологии и эволюции в исследованиях моло дых ученых. Материалы шестой конференции молодых сотрудников и аспирантов ИПЭЭ РАН. Москва: Т-во научных изданий КМК. 2014. 230 с. ...»

«Министерство сельского хозяйства РФ ФГБОУ ВПО Кубанский государственный аграрный университет ИНТЕРАКТИВНАЯ АМПЕЛОГРАФИЯ И СЕЛЕКЦИЯ ВИНОГРАДА (материалы Международного симпозиума 20–22 сентября 2011 года) INTERACTIVE AMPELOGRAPHY AND GRAPEVINE BREEDING (collected papers of the International Symposium 20-22 September 2011) Краснодар 2012 1 УДК 634.8(092) ББК 42.36 И73 И73 Интерактивная ампелография и селекция виногра да: материалы Международного симпозиума 20–22 сен тября 2011 года / под общей ...»

« Сад наслаждений (XII век) БИБЛИОТЕКА Содержание Предисловие 5 Введение Картина мира средневекового человека 16 Средневековый хронотоп 43 Макрокосм и микрокосм 56 Что есть время? 103 На праве страна строится. 167 Доброе, старое право 169 Право и обычай 184 Всеобщая связь людей 198 Крестьянин, рыцарь, бюргер 211 Средневековые представления о богатстве и труде 225 Дар ждет ответа 228 Грех корыстолюбия 247 ...»

«РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК Ботанический институт им. В. Л. Комарова Л. Б. ГОЛОВНЁВА Н. В. НОСОВА АЛЬБ-СЕНОМАНСКАЯ ФЛОРА ЗАПАДНОЙ СИБИРИ САНКТ-ПЕТЕРБУРГ Марафон 2012 УДК 561 : 551.763.3 RUSSIAN АCADEMY OF SCIENCES KOMAROV BOTANICAL INSTITUTE Редактор д. б. н. Л. Ю. Буданцев Головнёва Л. Б., Носова Н. В. Альб-сеноманская флора Западной Сибири.  — СПб.: Марафон, 2012. — 436 с., ISBN 978-5-903343-10-2 Подведены итоги многолетнего изучения альб-сеноманской флоры Западной Сибири  — одной из наиболее ...»

«МИНИСТЕРСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА Российской Федерации ФГБОУ ВПО Кубанский государственный аграрный университет В.Г. Рядчиков Основы питания и кормления сельскохозяйственных животных Краснодар - 2012 1 МИНИСТЕРСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА Российской Федерации ФГБОУ ВПО Кубанский государственный аграрный университет В.Г. Рядчиков Основы питания и кормления сельскохозяйственных животных (учебно-практическое пособие) Предназначено в качестве учебно-практического пособия для студентов ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 80-летию со дня рождения профессора Кобы В.Г. САРАТОВ 2011 УДК 378:001.891 ББК 4 Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 80-летию со дня рождения профессора Кобы В.Г. / Под ред. Е.Е. ...»

«Министерство сельского хозяйства РФ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Мичуринский государственный аграрный университет МАТЕРИАЛЫ 64-й НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ СТУДЕНТОВ И АСПИРАНТОВ 27-29 марта 2012 г. III РАЗДЕЛ Мичуринск-наукоград РФ 2012 Печатается по решению УДК 06 редакционно-издательского совета ББК 94 я 5 Мичуринского государственного М 34 аграрного университета Редакционная коллегия: В.А. Солопов, Н.И. Греков, ...»

«Институт систем энергетики им. Л.А. Мелентьева СО РАН Институт кибернетики им. В.М. Глушкова НАН Украины Иркутская государственная сельскохозяйственная академия Стохастическое программирование и его приложения Научные редакторы: член-корреспондент НАН Украины П.С. Кнопов доктор технических наук В.И. Зоркальцев г. Иркутск 2012 УДК 519.856 ББК B 183.4 Стохастическое программирование и его приложения / П.С. Кнопов, В.И. Зоркальцев, Я.М. Иваньо и др. [Электронный ресурс]. – Иркутск: Институт систем ...»






 
© 2013 www.seluk.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.