WWW.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

 

Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 17 |
-- [ Страница 1 ] --

КАЗАХСКИЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ

АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ

Н.П.ИВАНОВ

доктор ветеринарных наук, профессор, академик НАН РК

К.А.ТУРГЕНБАЕВ

доктор

ветеринарных наук, профессор

А.Н. КОЖАЕВ

кандидат ветеринарных наук

ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

ЖИВОТНЫХ

Том 4

Болезни птиц, плотоядных и пушных

зверей, пчел, рыб, малоизвестные

болезни и медленные инфекции Алматы, 2012 УДК 619:616.981.42 (075.8) ББК 48.73Я73 И22 Учебное пособие рассмотрено и рекомендовано к изданию Ученым Сове том факультета Ветеринарной медицины и биотехнологии КазНАУ (протокол № 7 от 26 июня 2009 г.).

Иванов Н.П. и др.

И 22 Инфекционные болезни животных: Учебник в четырех томах / Н.П., Иванов, К.А.Тургенбаев, А.Н.Кожаев. - Алматы, 2012.

ISBN 978-601-241-108- Т.4: Болезни птиц, плотоядных и пушных зверей, пчел, рыб, малоизвестные болезни и медленные инфекции. – 290 с.

ISBN 978-601-241-347- В учебнике «Инфекционные болезни животных изданном в четырех томах изложены материалы по 155 нозологическим единицам. Описание таго или иного заболевания осуществлено по единой схеме. Дается определение появления чего, затем характеристика возбудителя, клинические проявление и патологоанотомические изменения, далее приведены методики и меры борьбы.

Последние могут включить лечение, профилактические и оздоровительные меры.

Для лудшего закрепления материала в начале ставится цель занятия, а затем, в конце, вопросы для самопроверки.

В четвертом томе представлены материалы по инфекционным болезням птиц, болезням плотоядных и пушных зверей, болезни пчел, рыб, малоизвестные болезни и медленные инфекции.

Книга является руководством к практическим занятиям и учебным пособи ем для студентов, магистрантов, ph-докторантов, изучающих курс инфекцион ных болезней животных.

УДК 619:616.981.42 (075.8) ББК 48.73Я Рецензенты:

доктор ветеринарных наук, профессор, академик НАН РК Т.С. Сайдулдин доктор биологических наук, профессор Б.Т. Толыспаев доктор ветеринарных наук, профессор К.И. Минжасов ISBN 978-601-241-347-2 (Т.4), Иванов Н.П.,Тургенбаев К.А.,Кожаев А.Н. ISBN 978-601-241-108- 27 БОЛЕЗНИ ПТИЦ 27.1 БОЛЕЗНЬ НЬЮКАСЛА ознакомить слушателей с болезнью Ньюкасла и ме Цель занятия:

рами борьбы с ней.

Ньюкаслская болезнь (Morbus newcastle, син.: псевдочума, азиатская чу ма) – высококонтагиозная вирусная болезнь птиц отряда куриных, характери зующаяся поражением органов дыхания, пищеварения и центральной нервной системы.

Ньюкаслская болезнь была зарегистрирована на острове Ява Краневальдом в 1926 году. Английский ученый Дойль в 1927 году обнаружил эту болезнь вблизи г. Ньюкасла и дал ей соответствующее название. Болеет и человек.

Возбудитель болезни - РНК-содержащий вирус, размером 120 - 180 нм из рода парамиксовирусов семейства Paramyxoviridae. Он обладает гемагглютини рующими свойствами по отношению к эритроцитам голубей, кур, индеек, мор ских свинок. Отечественные и зарубежные штаммы вируса болезни иммуноло гически однородны. Вирулентность полевых штаммов возбудителя сильно варь ирует, что влияет на степень клинического проявления болезни и ее эпизоотоло гические особенности. Вирус репродуцируется в 9 - 12-дневных куриных эм брионах, вызывая их гибель. Вирус развивается во многих первичных и переви ваемых культурах клеток с образованием цитопатических изменений.

Устойчивость вируса к действию физических и химических факторов за висит от наличия белков и рН среды. Он устойчив к рН в диапазоне 2 - 10. Сол нечный свет инактивирует его за 2 сут, рассеянный свет - за 15 дней. Вирус не утрачивает активности в высушенных при температуре 17 - 18 °С органах 2 года, в птичниках в зимнее время сохраняется 140 дней, летом - 7 дней. В гниющих трупах он инактивируется через 3 недели;

в замороженных тушках кур жизне способен свыше 800 дней. При кипячении вирус в тушках птиц погибает лишь через 40 - 60 мин. Биологические процессы, развивающиеся при хранении поме та, инактивируют вирус через 20 дней. Растворы формалина (1 - 2%-ные), хлор ной извести (3 %-ный), едкого натра (2 %-ный), ксилонафта-5 (4 - 5 %-ный) уби вают его за несколько минут.

Эпизоотологические данные. В естественных условиях ньюкаслскую бо лезнь чаще регистрируют у птиц из отряда куриных (куры, индейки, фазаны, павлины). Описаны случаи заболевания голубей, сорок, попугаев, ястребов. Сте пень восприимчивости к вирусу у разных пород и возрастных групп птицы не одинаковая. Молодые индюшата более восприимчивы к заражению, чем взрос лые индейки. Зарегистрированы вспышки болезни у цыплят при отсутствии за болевания взрослой птицы, находившейся в контакте с молодняком.

Источник возбудителя инфекции - больные и переболевшие птицы, выде ляющие вирус со всеми секретами, экскретами, яйцами и выдыхаемым воздухом.

Вирус начинает выделяться в инкубационный период через 24 ч после заражения птицы. В организме переболевшей птицы его обнаруживают в течение 2 - 4 мес после клинического выздоровления.

Факторами передачи вируса могут быть яйца, перо и пух, полученные от больных птиц, тушки вынужденно убитой птицы, инвентарь, подстилка, корма.

При инкубации инфицированных яиц вирус вызывает септицемию и гибель ку риных эмбрионов. Погибший эмбрион гиперемирован, отечен, на голове и ко нечностях имеются массовые точечные кровоизлияния. При содержании боль ших партий больной птицы инфицированный воздух из помещений выбрасыва ется вентиляторами наружу и потоками ветра разносится на расстояние до 3 - км.





Заражение птицы происходит алиментарным и аэрогенным способами че рез корм, воду, воздух, при совместном содержании здоровой и больной птицы.

(В благополучные хозяйства возбудителя чаще заносят с яйцами, поступающими для инкубации).

Резервуаром вируса могут быть дикие виды птиц, а также домашние утки и гуси. Ньюкаслская болезнь чаще проявляется в виде эпизоотии. Она имеет неко торую периодичность и относительную летне-осеннюю сезонность, связанную с увеличением поголовья в этот период и с усилением хозяйственной деятельно сти. В летнее время года болезнь чаще протекает с поражением нервной систе мы.

В промышленных хозяйствах с поточной системой выращивания птицы нередко формируются стационарные эпизоотические очаги болезни. Это опреде ляется длительным сохранением вируса во внешней среде, массовым вирусоно сительством и непрерывной циркуляцией возбудителя между технологическими группами кур. Вирус в активном состоянии может сохраняться в организме кле щей (Argus Persicus), обитающих в птичниках 213 дней. Установлена трансова риальная передача вируса нимфальным стадиям куриного клеща. Заболевае мость высокая - до 100 %, летальность - 60 - 90 %.

Клинические признаки. При естественном заражении птицы инкубацион ный период болезни 2 - 15 дней, что зависит от путей проникновения и вирулент ности вируса, возраста птицы и условий содержания. Различают острое, подо строе и хроническое течение, типичную и атипичную формы болезни. При типич ной форме отмечают повышение температуры тела, слабость, птицы отказывают ся от корма, теряют ориентацию;

у 40 – 70 % заболевших наблюдают расширение зоба, истечение из ротовой полости дурно пахнущей жидкости, выделяется жид кий помет с примесью слизи, крови и желчи. Птица дышит с открытым клювом, слышны разнообразные звуки, вызванные закупоркой экссудатом дыхательных путей, птица чихает, пытаясь освободиться от скопившегося экссудата;

появляют ся признаки поражения нервной системы в виде парезов и параличей, что приво дит к скручиванию шеи, отвисанию крыльев, хвоста, поражению ног, атаксии, тремору. Задерживаются рост и развитие птиц, резко снижается яйценоскость, возникают желточный перитонит и керато-конъюнктивит (через 3 - 5 дней после заражения).

Атипичная форма болезни протекает без характерных признаков. Ее чаще регистрируют среди молодняка. Такие вспышки болезни с преимущественным поражением молодняка в некоторых странах получили название «цыплячья чу ма» и «пневмоэнцефалит цыплят». Ведущим клиническим признаком при дан ной форме болезни являются скручивание шеи, параличи ног и крыльев, судоро ги. Поражения нервной системы наблюдаются обычно у индюшат. При атипич ной форме птицы могут легко переболевать, а в некоторых случаях болезнь даже протекает бессимптомно. Атипичные формы болезни часто возникают при цир куляции слабовирулентных штаммов вируса в стадах птиц с различной степенью напряженности иммунитета и широком применении антибиотиков. В настоящее время в ряде стран выделено несколько естественно ослабленных штаммов: В (США), F (Англия), «Флоренс» (Италия), вызывающих при заболевании лишь иммунологическую перестройку организма (наличие сывороточных антител) без клинического переболевания.

Патоморфологические изменения широко варьируют в зависимости от тяжести болезни и поражения отдельных систем организма. При остром течении преобладают изменения, характерные для септицемии. Отмечают кровоизлияния в выводных протоках желез мышечного отдела и на границе перехода мышечно го отдела в железистый отдел желудка, в тонком отделе кишечника, прямой кишке. У основания слепых отростков кровоизлияния обнаруживают в 100 %, в передней части прямой кишки - в 98,2 %, по выводным протокам желез желудка - в 60 %. Отмечаются кровоизлияния субэпикардиальные и в фолликулы яични ка. При хроническом течении труп истощен, оперение вокруг клоаки запачкано пометом. В кишечнике находят плоские дифтероидные язвы с многочисленными петехиями. В результате атрофии слизистой оболочки стенка двенадцатиперст ной и тонких кишок истончена. При осложнениях находят воспаление воздухо носных мешков, некротический гепатит, серозно-фибринозный перитонит, ова риосальпингит.

Лабораторная диагностика. Для выделения вируса заражают 10 - дневных эмбрионов кур суспензией из паренхиматозных органов, головного мозга, крови, приготовленной на физиологическом растворе в разведении 1:10.

Суспензию центрифугируют при 1000 - 1500 об/мин 10 минут, к надосадочной жидкости добавляют по 100 ЕД пенициллина и стрептомицина на 1 см3. Вирус содержащий материал в дозе 0,2 см3 вводят в аллантоисную полость куриных эмбрионов, которых затем инкубируют при 37°С. Через 30 - 72 часа эмбрионы погибают с характерными признаками: кровоизлияния на голове и теле зароды ша, застойные явления в сосудах лапок и крыльев.

Вирус культивируют и в фибробластах цыплят, крольчат, эмбрионах сви ньи. Суспензию из патологического материала предварительно обрабатывают (по общепринятой методике) или инфицированную аллантоисную жидкость (в разведениях) вводят в пробирки с культурами клеток в количестве 0,5 см3. Через 24 - 48 часов клетки культуры оказываются сильно измененными: цитоплазма уплотнена, лишена вакуолей, наступает кариопикноз.

Серологические исследования. Околоплодную жидкость погибших эм брионов проверяют в РГА (предварительно на предметном стекле) с петушины ми эритроцитами (5%-ной концентрации).

При положительной реакции ставят пробирочную РГА, а затем РЗГА со специфической сывороткой.

Реакцию гемагглютинации ставят на досках из плексигласа с углублениями или в пробирках. Готовят двукратные разведения вируссодержащего материала, начиная с 1:2 до 1:1024, в лунки или пробирки разливают физиологический раствор по 0,25 см3;

затем в первую лунку вносят 0,25 см3 испытуемого материала, смеши вают и переносят 0,25 см3 в следующую и т. д. Таким образом, получают ряд по следовательных разведений: 1:2, 1:4, 1:8 и т. д.;

из последней пробирки 0,25 см удаляют. Затем в каждую пробирку вносят по 0,25 см3 1 %-ной взвеси куриных эритроцитов. Контролем служит 0,25 см3 физиологического раствора и 0,25 см взвеси эритроцитов. Пробирки встряхивают и оставляют при комнатной темпера туре на 30 - 40 минут. При положительной реакции эритроциты склеиваются и рав номерно в виде зонтика оседают на дно, при отрицательном результате эритроци ты, оседая на дно, образуют «пуговку». Титром вируса считают наибольшее его разведение, при котором наблюдается агглютинация эритроцитов (1 АЕ - одна агг лютинирующая единица).

Реакцию задержки гемагглютинации (РЗГА) ставят в двух случаях: для идентификации исследуемого вируса по эталонной сыворотке и для определения наличия специфических антител по эталонному штамму вируса.

Постановке основной реакции предшествует определение рабочей дозы антигена (вируса), которую берут в реакцию в четырехкратной концентрации ( АЕ) к титру вируса. Например, если титр антигена равен разведению 1:256 ( АЕ), то рабочая доза будет 1 :64 (4 АЕ). Для ее приготовления берут 63 см3 фи зиологического раствора и добавляют к нему 1 см3 исходного вируссодержащего материала.

После этого ставят контроль рабочей дозы. Для этого в четыре лунки (про бирки) разливают физиологический раствор по 0,25 см3 и проводят титрование рабочей дозы антигена. В первую лунку (пробирку) вносят 0,25 см3 рабочей дозы антигена, трижды пипетируют и переносят во вторую и т. д.;

из четвертой (по следней) пробирки после пипетирования удаляют 0,25 см3. В каждую пробирку добавляют 1%-ную взвесь эритроцитов по 0,25 см3. При правильном выборе ра бочей дозы антигена в первой и во второй лунках (пробирки), содержащих 2АЕ и 1АЕ, будет наблюдаться полная агглютинация эритроцитов (зонтик) при от сутствии агглютинации в третьей и четвертой пробирках, содержащих 1/2АЕ и 1/4АЕ. Если результаты контрольного опыта не совпадут с указанными, рабочую дозу следует довести до указанной активности (развести физиологическим рас твором или добавить антигена), после чего контроль дозы ставят вновь.

Для постановки реакции сыворотку разводят с коэффициентом 2, начиная с 1:10 (0,1 см3 сыворотки и 0,9 см3 физиологического раствора). После того как сыворотка будет разлита по лункам (пробиркам) по 0,25 см3, в них добавляют по 0,25 см3 соответствующего антигена, содержащего 4 АЕ. Приготовленный ком плекс (антиген + антитело) встряхивают и ставят при температуре 18 - 22°С на контакт. Через 30 минут во все пробирки добавляют по 0,5 см3 1%-ной взвеси эритроцитов, снова встряхивают и оставляют при той же температуре. РЗГА чи тают через 30 и 45 минут.

В качестве контроля используют смеси следующих компонентов: 0,5 см физиологического раствора и 0,5 см3 1%-ной взвеси эритроцитов;

0,25 см3 фи зиологического раствора, 0,25 см3 вируссодержащей исследуемой жидкости, 0, см3 1%-ной взвеси эритроцитов;

контроль сыворотки на спонтанную агглютина цию эритроцитов. С этой целью к 0,25 см3 сыворотки (2 - 3 лунки), взятой в раз ведении 1:20, добавляют 0,25 см3 физиологического раствора и 0,5 см3 1%-ной взвеси эритроцитов. Если сыворотки не обладают агглютинирующей способно стью, то в лунках эритроциты выпадают в осадок, как и в контроле. Если же в лунках наблюдается агглютинация, то сыворотку необходимо обработать эрит роцитами. Для этого к разведенной 1:5 сыворотке добавляют в равном объеме 50%-ную взвесь эритроцитов (для истощения используют тот же вид эритроци тов, с которыми ставят РЗГА). Смесь встряхивают и оставляют на 30 минут при температуре 4 °С, затем центрифугируют 5 минут при 2000 об/мин, отсасывают надосадочную жидкость (теперь сыворотка разведена 1:10) и повторно проверя ют на спонтанную агглютинацию.

Результаты РЗГА оценивают по отсутствию или наличию агглютинации эритроцитов. Если в исследуемых разведениях сыворотки содержатся антитела (антигемагглютинины), специфически тормозящие гемагглютинацию, то антиген (диагностикум) теряет способность агглютинировать эритроциты. В этом случае в первых 3 - 8 лунках или выше (в зависимости от активности антисыворотки) гемагглютинация отсутствует. В последних лунках (пробирки), где находятся большие разведения сыворотки (мало антител), будет наблюдаться агглютина ция эритроцитов.

Метод флуоресцирующих антител. Ускоренную диагностику псевдочумы птиц проводят методом флуоресцирующих антител, который является предвари тельным методом, применяемым в комплексе с другими диагностическими ме тодами.

С любого участка свежих или свежезамороженных легкого, печени, почек и селезенки, взятых от убитой или павшей птицы (не позднее 24 часов после их гибели), делают срезы пинцетом и ножницами.

Из каждого органа готовят по два отпечатка на двух предметных стеклах (площадь 0,8 х 0,8 см). Границу материала, нанесенного на предметное стекло, отмечают восковым карандашом с обратной стороны стекла.

После высушивания на воздухе препараты-отпечатки фиксируют охлаж денным ацетоном в течение 4 минут, затем подсушивают на воздухе. Фиксиро ванные препараты до окрашивания люминесцирующей сывороткой в случае не обходимости можно хранить при низкой температуре (до -10°С) не более двух месяцев.

С целью осуществления дифференциальной диагностики препараты из па тологического материала, подозреваемого на наличие в нем вируса псевдочумы, окрашивают параллельно оспенным родаминсульфохлоридом (РСХ конъюгатом) иммунной сыворотки (контроль).

После этого все препараты с нанесенными РСХ-конъюгатами осторожно, чтобы не слить меченую сыворотку, помещают во влажную камеру (чашки Пет ри с влажным тампоном ваты или кусочком фильтровальной бумаги) на 20 ми нут при температуре 37 °С.

Остатки РСХ-конъюгатов с отпечатков осторожно смывают дистиллиро ванной водой, а стекла с препаратами для промывания помещают в сосуд с во дой (стеклянная чашка), разделяя каждое стекло друг от друга тонкой стеклян ной палочкой. Промывают в течение 1-2 часов проточной водопроводной водой.

После промывания мазки высушивают на воздухе и микроскопируют.

Реакция флуоресцирующих антител при применении псевдочумного РСХ конъюгата иммунной сыворотки расценивается положительно в случае выявле ния специфического красно-оранжевого свечения в лимфоидных клетках и псев доэозинофилах. Установлено, что чем вирулентнее вирус, тем больше поражен ных клеток с характерным свечением клеточных структур. Если в испытуемом патологическом материале находится высоковирулентный штамм вируса псев дочумы, то в препаратах из паренхиматозных органов обнаруживают лимфоци ты, моноциты, лимфоидные клетки паренхимы с яркой красно-оранжевой люми несценцией ядра или частично ядра и частично цитоплазмы. Ядра псевдоэози нофилов обладают яркой красно-оранжевой флуоресценцией.

При наличии в испытуемом патологическом материале слабопатогенного штамма вируса псевдочумы в лимфоцитах, моноцитах, клетках паренхимы и псевдоэозинофилах цитоплазма имеет оранжевую люминесценцию. Если иско мого антигена в испытуемых препаратах нет, будут видны буро-зеленоватые контуры указанных клеток.

При исследовании препаратов из куриных эмбрионов, зараженных мате риалом, содержащим вирус псевдочумы, делают тонкие препараты из алланто исной жидкости и аллантоисной оболочки, подсушивают их на воздухе и фикси руют охлажденным ацетоном в течение 4 минут. Окраску и промывание препа ратов проводят, как указано выше.

При сильнопатогенном штамме вируса псевдочумы специфический анти ген обнаруживают в.препаратах из аллантоисной жидкости через 12 - 24 часа после заражения эмбрионов. В положительных случаях в люминесцентном мик роскопе на темном фоне препарата обнаруживают яркое желто-зеленое свечение конгломератов антигена вируса псевдочумы.

Люминесцентно-микроскопическое исследование можно считать положи тельным, если в препарате обнаружены хотя бы единичные конгломераты с яр кой флуоресценцией. При отрицательном результате исследования, как правило, в препарате будут видны лишь тени структур препарата.

Антиген вируса псевдочумы в культуре ткани при помощи флуоресцеини зотиоцианатовых (ФИТЦ)-конъюгатов обнаруживают следующим образом. В качестве препаратов используют культуру ткани фибробластов куриных эм брионов, выращенную в пробирке на покровных стеклах. После образования мо нослоя клеток их заражают вируссодержащим материалом в дозе 0,2 мл на каж дую пробирку в титрах 10-1 до 10-3 LD50.

В качестве контроля незараженными оставляют 4 - 5 пробирок с культурой ткани.

Покровные стекла с зараженной культурой ткани вынимают из пробирок при помощи пастеровской пипетки с запаянным концом через 5 - 16 часов после заражения вирусом псевдочумы. Препараты осторожно отмывают от ростовой среды двумя-тремя порциями дистиллированной воды, просушивают на воздухе и фиксируют ацетоном в течение 4 минут.

Высушенные фиксированные препараты помещают на предметное стекло клетками вниз и подслаивают псевдочумной конъюгат иммунной сыворотки в красящем титре, затем помещают во влажную камеру на 20 минут при темпера туре 37°С.

Окрашенные препараты промывают в течение 1 часа проточной водопро водной водой и подсушивают на воздухе. Затем препараты клетками вниз поме щают на предметное стекло, подслаивают полистерол или разведенный глицерин (9 частей физиологического раствора и 1 часть глицерина);

такие препараты го товы для люминесцентно-микроскопического исследования.

В сроки 5 - 16 часов после заражения культуры ткани фибробластов кури ных эмбрионов происходят начальные изменения в цитоплазме, перинуклеарной зоне и ядре под действием вируса псевдочумы. В дальнейшем поражение куль туры ткани проявляется в виде характерных образований типа телец-включений и симпластов.

Отрицательной реакция считается при наличии в препаратах только серо зеленоватых теней клеток.

Реакция иммунофлуоресценции при псевдочуме считается ускоренным предварительным методом диагностики и применяется в комплексе с другими общепринятыми методами.

Биологические исследования. Суспензию из патматериала в дозе 1 мл вводят внутримышечно 2 - 3 невакцинированным против псевдочумы цыплятам 1 - 3-месячного возраста. Наблюдение за зараженной птицей ведут 10 - 15-дней.

Дифференциальный диагноз. Следует исключать грипп, инфекционный ларинготрахеит, пастереллез, инфекционный бронхит, спирохетоз, отравления.

Лечение не разработано. Больных лечить нецелесообразно ввиду опасно сти разноса возбудителя инфекции.

Иммунитет. Переболевшие и вакцинированные птицы приобретают им мунитет. В сыворотке крови птиц накапливаются иммунтела, уровень которых зависит от возраста птицы, сроков, кратности и способа вакцинации. В большин стве крупных птицеводческих хозяйств применяют аэрозольный метод вакцина ции, используя вирус вакцины из штамма B1, Ла-Сота, Н, Бор-74. С 1980 г. также применяют инактивированную вакцину против ньюкаслской болезни. Птице с 120-дневного возраста вводят внутримышечно 1 см3 препарата. Иммунитет обра зуется через 10—14 дней после вакцинации и сохраняется 6 мес. В неблагопо лучных хозяйствах цыплят вакцинируют вакциной из штамма BI в 20 — 25, 45 — 60, 140—150-дневном возрасте и далее через каждые 6 мес или применяют вак цину из штамма Ла-Сота, которую вводят цыплятам в возрасте 10—15, 35—40, 120 — 140 дней и затем через каждые 6 мес. При отсутствии у выведенных цып лят антител первую вакцинацию проводят в возрасте 5 — 6 дней вакциной из штамма B1 за 3 — 5 дней до начала и в течение 5 — 7 дней после вакцинации ис ключают применение сульфаниламидных препаратов и антибиотиков. Иммуни тет у аэрозольно привитой птицы наступает через 7 — 8 дней и сохраняется мес. Можно одновременно прививать птиц против ньюкаслской болезни и оспы.

Напряженность и длительность иммунитета зависят от факторов кормления и содержания. Поэтому за 5 — 7 дней до и после вакцинации необходимо увели чить содержание в рационе наиболее важных витаминов (А, С, D, Е, группы В).

Организация профилактических и оздоровительных мероприятий.

Предупреждают занос возбудителя в благополучные хозяйства с инкубационны ми яйцами, птицей, обслуживающим персоналом, инфицированным инвентарем, кормом, подстилкой. Территория птицеферм должна быть ограждена, доступ по сторонних лиц в птицеводческие помещения запрещают. Всю возвращаемую та ру после вывоза мяса и птиц нужно промывать горячим 3 %-ным содовым рас твором, дезинфицировать парами формальдегида путем распыления 40 %-ного формалина из расчета 15 — 20 мл на 1 м3 воздуха при 30-минутной экспозиции.

Температура внутри дезинфекционной камеры должна быть не ниже 12—15°С.

Окна и вентиляционные отверстия в птичниках должны быть закрыты сеткой, препятствующей залету дикой птицы. В крупных хозяйствах необходимо содер жать одновозрастную птицу на одной площадке и соблюдать оптимальные раз рывы между новыми партиями птиц.

При появлении подозрения на ньюкаслскую болезнь проводят лаборатор ные исследования. В случае положительного результата хозяйство объявляют неблагополучным и на него накладывают карантин. Больную птицу неблагопо лучного птичника убивают и сжигают;

птицу, находившуюся в контакте с боль ной, убивают и подвергают термической обработке. В угрожаемом птичнике кур прививают вакциной. Запрещают вывоз птиц, яиц и мяса до ликвидации болезни.

Малоценные предметы сжигают, а помещение и оставшийся инвентарь дезин фицируют растворами едкого натра (1,5%-ный), хлорной извести (3 %-ный), креолина (5 %-ный). Одновременно проводят аэрозольную дезинфекцию. Помет больной птицы сжигают, а условно здоровой — складируют для биотермическо го обезвреживания.

Прививают весь подрастающий молодняк хозяйства, птицу личного поль зования в населенных пунктах. Пух и перо после вынужденного убоя подозри тельной по заболеванию птицы дезинфицируют 3 %-ным р-ром формальдегида в течение 30 мин.

Если при поточной системе выращивания птицы не удается ликвидировать вспышку болезни, то в воспроизводстве цыплят необходимо сделать профилак тический перерыв на 2 мес с полной санацией помещений и заменой птицы. В хозяйствах, находящихся в угрожаемой зоне, всю восприимчивую птицу приви вают согласно наставлению.

Карантин снимают с хозяйства через 30 дней после ликвидации больной птицы и проведения надежной санации помещений, территории согласно инст рукции.

Вопросы для самопроверки:

1. Определение болезни 2. Характеристика возбудителя.

3. Эпизоотологические особенности.

4. Клиническая картина болезни.

5. Патоморфологические изменения.

6. Лабораторная диагностика (серологические, вирусологические исследо вания и постановка биопробы).

7. Дифференциальная диагностика.

8. Лечение птицы при болезни Ньюкасла.

9. Иммунитет при болезни Ньюкасла.

10. Организация профилактических и оздоровительных мероприятий при болезни Ньюкасла.

ознакомить слушателей с гриппом птиц и методами борьбы с Цель занятия:

Грипп птиц (Grippus avium) – контагиозная, вирусная болезнь птиц, ха рактеризующаяся септицемией и проявляющаяся угнетением, отеками, пораже нием органов дыхания и пищеварения.

Возбудитель – РНК-содержащий вирус (Influenza virus А подтип Hav-1), относящийся к роду инфлюэнца, к группе миксовирусов, семейству ортомиксо вирусов. Величина вириона 80 - 120 нм. Все известные вирусы гриппа подразде ляют на 8 подтипов (А1–А8). Возбудитель имеет определенное родство с вируса ми гриппа типа А человека, лошади, свиньи. Вирус репродуцируется в куриных эмбрионах и культуре клеток, обладает гемагглютинирующими свойствами по отношению к эритроцитам многих видов птиц, млекопитающих животных и че ловека. В организме птиц вирус индуцирует антигемагглютинины, нейтрали зующие и комплементфиксирующие антитела.

Устойчивость. При температуре 65-70°С вирус гриппа птиц инактивиру ется за 2 - 5 мин. При 4°С инфекционные и гемагглютинирующие свойства со храняются несколько недель. Вирус хранят при низких температурах и в лиофи лизированном состоянии до 2 лет. При глубоком замораживании (-70 °С) вирус остается вирулентным в мясе свыше 300 дней. Высушивание инфицированного субстрата консервирует вирус. В 1 %-ном растворе NaCl он не погибает 5 - 7 не дель. Вирус инактивируют за 5 мин водные растворы 5 %-ной соляной кислоты, 4 %-ного фенола, 3 %-ной хлорной извести, 2 %-ного едкого натра, 5 %-ной кар боловой кислоты.

Эпизоотологические данные. Грипп зарегистрирован среди многих видов домашних и диких птиц. Вирус подтипа А1, выделенный от кур, индеек и голу бей, патогенен для мышей, кроликов и морских свинок. Среди вируса гриппа птиц выявляются штаммы, у которых в суперкапсидной оболочке содержится нейраминидаза, свойственная вирусам гриппа человека и лошадей. Это свиде тельствует о большом разнообразии генофонда вирусной популяции, циркули рующей среди птиц. Доказана межвидовая передача вируса гриппа человека птице и циркуляция человеческого вируса гриппа А2 среди диких и домашних птиц. От диких птиц вирус гриппа выделяли в межэпидемический период. Среди диких и домашних птиц могут одновременно циркулировать несколько антиген ных разновидностей вируса гриппа, свойственного человеку, птицам и домаш ним животным.

В хозяйство возбудитель гриппа птиц может быть занесен с кормами, ин вентарем, оборудованием;

особую опасность представляет недезинфицированная тара из-под тушек кур и яиц. Первые случаи заболевания, как правило, возника ют у цыплят и взрослой ослабленной птицы, особенно при недоброкачественном кормлении, перевозках, переуплотненной посадке. Пассажи вируса через ослаб ленный организм кур повышают его вирулентность и способствуют последую щему заболеванию птицы, содержащейся в нормальных условиях. Как правило, грипп поражает всю восприимчивую птицу в хозяйстве в течение 30 - 40 дней.

Вирус гриппа вызывает заболевание птиц при респираторном, перораль ном, подкожном и внутримышечном заражениях. В хозяйствах при клеточной системе содержания птиц основное значение в распространении возбудителя имеет аэрогенный путь и передача его с водой.

Источником возбудителя чумы птиц являются больные и переболевшие (виру соносители в течение 2 мес) птицы. Из организма больной птицы вирус выделяется со всеми экскретами и секретами, а также с яйцами. Факторами распространения возбудителя внутри хозяйства могут стать грызуны, кошки и, особенно, дикая птица, проникающая или гнездящаяся в птичниках. Наличие кур-вирусоносителей поддер живает эпизоотический очаг в хозяйстве при непрерывном введении новой воспри имчивой птицы, которая в процессе выращивания заболевает, и таким образом фор мируется стационарное неблагополучие. Заболеваемость птиц гриппом достигает - 100%, смертность - 10 - 90 %, что зависит от вирулентности вируса и условий со держания птицы. В неблагополучных по гриппу хозяйствах цыплята и куры часто заболевают респираторным микоплазмозом, колисептицемией, инфекционным ла ринготрахеитом. Взрослая птица на 40 - 60% теряет яичную продуктивность, которая восстанавливается лишь через 1,5 - 2 мес после выздоровления. Нередко после пере болевания гриппом у птиц исчезает иммунитет против Ньюкаслской болезни, ин фекционного ларинготрахеита, бронхита и оспы, что иногда приводит к возникнове нию данных болезней.

Клинические признаки. Инкубационный период - 3 - 5 дней. Протекает бо лезнь остро, подостро и хронически. В начале болезни у птиц появляется взъеро шенность оперения, теряется яйценоскость;

куры стоят с опущенной головой и за крытыми глазами;

видимые слизистые оболочки гиперемированные и отечные, не редко из слегка приоткрытого клюва выделяются тягучие слизистые истечения, но совые отверстия заклеены воспалительным экссудатом.

У отдельных кур отмечается отечность лицевой части сережек. Гребень и сережки темно-фиолетового цвета вследствие застойных явлений и интоксика ции. Дыхание хриплое и учащенное, температура тела поднимается до 44°С, пе ред гибелью падает до 30°С. При заболевании, вызванном вирусом гриппа под тип А1, летальность, как правило, достигает 100 %. При подостром и хрониче ском течении гибнет 5 - 20% заболевших птиц.

Наряду с респираторным симптомокомплексом наблюдают диарею, у больной птицы помет жидкий, окрашен в коричнево-зеленый цвет. Могут воз никнуть атаксия, неврозы, судороги, манежные движения, а в предагональной стадии - тонические и клонические судороги шейных и крыловых мышц. Воз можны случаи легкого течения болезни без выраженных клинических призна ков.

Патоморфологические изменения могут быть разнообразными, что зави сит от длительности течения болезни. Наиболее характерны для болезни призна ки геморрагического диатеза и наличие подкожных отеков в области глотки, гортани, шеи, груди, ног. Находят массовые и единичные кровоизлияния под кожей, в мышцах, сердце, паренхиматозных органах и слизистых оболочках. У 45 % павших птиц обнаруживают ринит, фарингит и конъюнктивит;

в 60% слу чаев – кровоизлияния в желудке и кишечнике.

Постоянно обнаруживаются при гриппе птиц гастроэнтерит, перитонит, перикардит, бронхит, аэросаккулит, отек легких, застойные явления во внутрен них органах, синюшность мышечной ткани. Особенно характерны изменения в головном мозге: геморрагический менингит, диффузные кровоизлияния, очаги отека и размягчение мозгового вещества. При гистологическом исследовании находят некробиотические очажки во всех отделах головного мозга.

Диагноз. На основании эпизоотологических особенностей проявления гриппа, характерных клинических признаков и патологоанатомических измене ний можно поставить лишь предположительный диагноз.

Для окончательного диагноза необходимо провести лабораторные иссле дования патологического материала (легкие, печень, головной мозг и др.), взя того от павших птиц в острую стадию болезни. Трупный материал должен быть свежим или законсервированным холодом (- 60 °С), или 50%-ным р-ром глице рина. Для серологических исследований от кур берут парные сыворотки крови в различные периоды развития болезни.

Вируссодержащий материал подготавливают обычным способом на бу ферном растворе, добавляют к 1 мл жидкости по 5 тыс. ЕД стрептомицина и пе нициллина и проводят заражение 9 - 12-дневных куриных эмбрионов в алланто исную полость. Через 48 ч после заражения берут аллантоисную жидкость и ис следуют ее на наличие вируса в реакции гемагглютинации. Так же используют многослойные культуры клеток куриного эмбриона для изучения ЦПД, возни кающего через 36 ч после заражения. Для биологической пробы используют 4-месячных цыплят, которым внутримышечно вводят 0,5 - 1 мл суспензии.

Через 3 - 5 дней при наличии вирулентного вируса у цыплят возникают респираторные симптомы болезни, иногда со смертельным исходом. Если вирус слабовирулентный, единственным доказательством его наличия служит выявле ние нарастания титра антител, появляющихся на 4 - 10-й день после заражения.

Из серологических методов можно использовать РЗГА, РП, РСК. В практических условиях обычно используют наиболее простую и доступную при массовых ис следованиях - РЗГА. У переболевшей гриппом птицы эту реакцию можно при менить для ретроспективной диагностики.

Лабораторная диагностика проводится для окончательного решения во проса об этиологии болезни, что достигается путем выделения вируса и иденти фикации его в РСК, РН и РТГА, а также выявления специфических антител в пе риод эпизоотии или по происшествии ее (ретроспективная диагностика).

Для диагностики необходимо иметь два диагностических набора: а) набор специфических антигенов и сывороток к ним для диагностики гриппа птиц три надцати серотипов;

б) диагностический набор для идентификации вируса Нью каслской болезни и гриппа птиц (актуального эпизоотического типа). Диагно стическими наборами пользуются в соответствии с наставлениями по их приме нению.

Выделение вируса. Патологический материал (селезенка, головной мозг, трахея, легкие, кишечник или свежие трупы) доставляют в лабораторию в замо роженном виде (-60°С) или законсервированном в 50%-ном стерильном растворе глицерина.

При жизни от больной птицы берут мазки из трахеи и клоаки стерильным ватным тампоном, который помещают в пробирку с 2 мл раствора Хенкса или физиологического раствора с антибиотиками (пенициллин и стрептомицин по - 1000 ЕД/мл). Кроме того, изоляцию вируса можно проводить из сгустка крови, который остается после отсасывания сыворотки.

Из материала на растворе Хенкса или физиологическом растворе готовят суспензию (1:5), надосадочную жидкость которой (после центрифугирования суспензий при 1,5 - 2 тыс. об/мин в течение 15 мин) обрабатывают антибиотика ми и используют для заражения куриных эмбрионов.

Заражение куриных эмбрионов. Испытуемую суспензию инокулируют 10-дневным куриным эмбрионом (не менее 5 на 1 пробу) в аллантоисную или ам ниотическую (лучше) полости общепринятым методом. Эмбрионы инкубируют в течение 72 ч. Экстраэмбриональную жидкость каждого эмбриона раздельно про веряют на геммаглютинирующую активность капельной РГА с 1%-ной взвесью эритроцитов кур. При отсутствии положительной РГА проводят еще 3 - 5 слепых пассажей, используют для заражения КЭ эмбриональную жидкость предыдущего пассажа. Если титры гемагглютининов низкие, проводят таким же образом еще 3 дополнительных пассажа. Проба испытуемого материала считается отрицатель ной, если в 3 - 5 слепых пассажах не будет обнаружено гемагглютинации и пато генного действия вирусов (гибели эмбрионов). При положительной РГА проводят идентификацию выделенного вируса.

Заражение культур клеток. В диагностической практике этот метод приме няют редко. Вирус после 2 - 5 пассажей хорошо развивается в культуре фибробла стов куриного эмбриона. ЦДП обычно проявляется через 24 - 48 ч (в зависимости от дозы и адаптации). Присутствие его устанавливают при помощи РГА и PНаг.

Предложен ускоренный метод титрования инфекционности вируса гриппа в куль туре клеток путем подсчета гемадсорбирующих клеток. Этот метод позволяет по лучить результат через восемь часов после заражения.

Биопроба на цыплятах. Испытуемую суспензию инокулируют цыплятам 2 - 3-месячного возраста. Летальную инфекцию у цыплят можно вызвать при любом методе заражения (подкожно, внутримышечно, в мозг, конъюнктиву) подтипами А1, А7 и А5 Заражение per os с кормом и водой удается не всегда, лишь в случае высокой патогенности эпизоотического изолята гриппа птиц. За раженные цыплята, как правило, гибнут через 36 - 72 ч, в зависимости от дозы и вирулентности возбудителя.

Индикация и идентификация вируса. Вирусоскопия, электронная и имму ноэлектронная микроскопия, обнаружение специфических телец-включений для диагностики данной инфекции обычно не применяются. Для этой цели широко ис пользуют методы иммунофлуоресценции, цитоскопию, биопробу (на птице и кури ных эмбрионах) и серологическую идентификацию.

Для индикации вируса в патологическом материале можно использовать РГА. Надосадочную жидкость после центрифугирования суспензии проб из ор ганов и тканей больной птицы, а также смывов исследуют в капельной или про бирочной РГА с 1%-ной суспензией эритроцитов кур.

С этой целью Л.И.Неклюдова (1979) рекомендует применять 0,5%-ную взвесь эритроцитов морской свинки (0,5 мл испытуемой жидкости и 0,5 мл эрит роцитов, тщательно смешивают и выдерживают при комнатной температуре).

Реакцию учитывают через 20 мин и 1 ч. Специфичность ее определяют в РТГА.

Цитоскопия. Метод заключается в исследовании тканевых элементов в от печатках, полученных со слизистой оболочки верхних дыхательных путей (луч ше) и органов. Для этой цели можно использовать тампоны, которыми брали смывы из трахеи и небной щели. Содержимое тампона переносят на предметное стекло таким образом, чтобы получить тонкий мазок-отпечаток. Препараты вы сушивают и окрашивают одним из методов: Романовского-Гимза, Пигаревского, Быковского и т.д. При окраске по Быковскому и Пигаревскому в цитоплазме клеток при гриппе обычно обнаруживают тельца-включения ярко-красного цве та;

при окраске по Романовскому-Гимза они фиолетового цвета.

Внутриклеточные включения находят не только в клетках цилиндрическо го эпителия, но и в цитоплазме макрофагов, лейкоцитов и плоского эпителия.

В настоящее время этот метод исследования используется с применением люминесцентной микроскопии.

Метод простого флюрохромирования. На мазки-отпечатки из органов и смывов наносят 1 - 2 капли рабочего раствора акридина оранжевого (1:10000), покрывают покровным стеклом и свежий препарат (в течение 10 мин после при готовления) рассматривают под люминесцентным микроскопом. Ядра клеток выявляются по изумрудно-зеленому свечению, РНК, плазма клеток - в виде не редко ограниченных гранул красного или оранжевого цвета. В препарате, имеющем вирус гриппа, выявляются включения в виде четко отграниченных яр ко-красных гранул в цитоплазме клеток.

Серологическая идентификация. Для идентификации гриппа птиц наи более простым, удобным и достоверным методом является РТГА. РН - штам моспецифическая, а также высоко достоверная, но используется в диагностике значительно реже, чем РТГА. Ее обычно применяют в некоторых неясных и спорных случаях.

РСК. Используют для определения типоспецифичности выделенного ви руса, когда в РТГА не удается установить родственных связей между вновь вы деленным штаммом и эталонными штаммами вируса гриппа по антисывороткам к ним. В этом случае в РСК с эталонными иммунными сыворотками против ви русов гриппа типов А, В и С устанавливают типовую принадлежность штамма.

РИФ. Данный метод может быть использован как экспрессметод диагно стики гриппа птиц. Препараты готовят непосредственно ex tempore от убитой или свежепавшей птицы. Прямой метод иммунофлуоресценции позволяет опре делять антиген вируса гриппа птиц в мазках-отпечатках тканей, идентифициро вать антигены данного вируса из различных тканей организма, инкубационных яиц, печени зараженных эмбрионов и культуры клеток фибробластов;

выявить вирусный антиген даже в тех случаях, когда вирус из пораженных тканей не уда ется.

Прямой и непрямой методы иммунофлуоресценции применяют общепри нятым способом.

РДП. В ветеринарной диагностической практике для идентификации вы деленного вируса эту реакцию не используют, так как необходимы концентри рованные и очищенные антигены. В основном применяют ее для изучения анти генной структуры вирусов гриппа.

ELISA - тест. Стандартизован для определения антител к вирусу гриппа птиц в сыворотке крови кур и индеек.

Разработан кинетический ELISA - метод (кELISA). Он позволяет титровать антитела в образце, используя только одно его разведение. Степень окрашивания в кELISA пропорционально количеству конъюгированных антител, связываю щихся твердой фазой. Метод кELISA для выявления антител к вирусу гриппа имеет существенные преимущества перед ELISA - методом.

Серодиагностика и ретроспективная диагностика. Обнаружение антиге магглютининов, вирус нейтрализующих и комплементсвязывающих антител надежный признак протекающей или уже прошедшей инфекции гриппа в стаде птицы.

Обязательным условием для ретроспективной диагностики гриппа птиц является одновременное исследование парных сывороток, так как для диагно стических целей имеет значение сравнительный титр антител против вирусов различных серологических подтипов в первой и второй пробах сыворотки. Пер вую пробу сыворотки хранят при 4°С или в замороженном виде. Обе пробы ис следуют одновременно по РТГА. Перед постановкой реакции сыворотки прогре вают при 60°С в течение 30 мин, а затем освобождают от термостабильных ин гибиторов, используя СО2 и другие методы.

Если титр антител во второй пробе сыворотки (через 10 - 14 дней после за болевания) превышает не менее чем в 4 раза титр антител к тому же типу вируса первой пробы, то РТГА считается положительной, подтверждающей диагноз гриппа птиц.

РСК. Применяют для обнаружения антигенов и антител в целях ранней ретроспективной диагностики гриппа. РСК ставят по классическому и модифи цированному методам.

РДП при диагностике гриппа птиц широкого применения не нашла, так как для постановки реакции необходимы высокие концентрации чистых антител.

РРГ (реакция радиального гемолиза) в настоящее время используется для серо-эпидемиологических исследований и при оценке эффективности противо гриппозных вакцин.

ELISA - метод. Показано хорошее совпадение результатов титрования сы вороточных антител методом ELISA, РСК и РИФ. Однако титры в ELISA - мето де значительно выше (титр 1:481 - 1:1520), чем в РСК и РИФ.

Дифференциальная диагностика. Генерализованную септическую форму гриппа необходимо дифференцировать от Ньюкаслской болезни, респираторную форму - от инфекционного бронхита, микоплазмоза, ларинготрахеита и других респираторных болезней.

Лечение не разработано. Лечить больную птицу нецелесообразно. Ввиду опасности распространения вируса больную птицу уничтожают.

Иммунитет. После переболевания гриппом птица приобретает нестериль ный иммунитет продолжительностью до 6 мес. Для специфической профилакти ки рекомендовано применять гидроксиламинрвую эмбрионвакцину типа А.;

жидкую и сухую инактивированные вакцины против гриппа птиц. Вакцины вво дят внутримышечно в область грудной мышцы или бедра, эмбрионвакцину дву кратно с интервалом в 14 дней, остальные — однократно. Вакцины применяют для прививок птиц с профилактической целью в угрожаемых по гриппу хозяйст вах. Прививают только клинически здоровую птицу (кур, уток, индеек) с дневного возраста. Через 14 — 21 день после прививки у птицы вырабатывается напряженный иммунитетдлительностью до 6 мес. Его напряженность обязатель но контролируют на 21 —30-й день после вакцинации в РЗГА. Если у 80% из об следованных птиц титр антигемагглютининов окажется не ниже 1:10, иммунитет считают напряженным.

Организация профилактических и оздоровительных мероприятий.

Необходимо обособленно размещать различные возрастные группы птиц на тер ритории, соблюдая при этом необходимые зооветеринарные разрывы. Комплек тование птичников и зон проводят только одновозрастной птицей. В межцикло вой профилактический перерыв помещения тщательно очищают и трехкратно дезинфицируют. Систематически контролируют благополучие хозяйств по гриппу, из которых завозят инкубационные яйца, проводят дезинфекцию транс порта, оборотной тары и строго выполняют ветеринарно-санитарные правила для птицеводческих хозяйств. При подозрении на возникновение гриппа птиц срочно уточняют диагноз лабораторным исследованием.

При возникновении болезни хозяйство карантинируют. Если установлен грипп в одном птичнике, то больную и подозрительную по заболеванию птицу убивают бескровным методом и уничтожают, остальную условно здоровую уби вают на мясо. Проводят тщательную дезинфекцию помещения. При появлении болезни в нескольких птичниках проводят тщательную ежедневную выбраковку и убой больной и ослабленной птицы. При наличии патологоанатомических из менений (перитониты, кровоизлияния в груднобрюшной полости, синюшность мышечной ткани) тушки вместе с органами направляют на техническую утили зацию.

При отсутствии изменений проводят полное потрошение тушек, внутрен ние органы утилизируют, а тушки проваривают и используют для пищевых це лей. Яйца, полученные от больной птицы, проваривают в течение 10 мин. Яйца, заложенные в инкубатор из неблагополучных птичников, утилизируют или уничтожают.

Для дезинфекции птичников применяют 3 %-ный р-р едкого натра ( 20°С), экспозиция 7 ч;

3 %-ный горячий (70—80°С) раствор едкого натра, экспо зиция 3 ч;

1 %-ный р-р формальдегида, экспозиция 1 ч;

осветленный р-р хлорной извести с содержанием 3% активного хлора, экспозиция 3 ч;

1 %-ный р-р надук сусной кислоты при экспозиции 6 ч. Дезинфекцию можно проводить также аэро золями 38—40%-ного р-ра формальдегида (15 мл/м3) или 20 %-ного р-ра надук сусной кислоты (20 мл/м3), экспозиция 6 ч.

Для дезинфекции тары в хозяйствах и на складах строят камеры объемом от 100 до 500 м3 и оборудуют их вентилятором для удаления газа. Аэрозоли из раствора формальдегида получают с помощью форсунки ПВАН и сжатого воз духа при рабочем давлении 3—4 атм или с помощью генератора АГУД-2.

Яйца для инкубации завозят из хозяйств, благополучных по гриппу. Каж дую партию выведенного молодняка выращивают в полностью освобожденном от птицы изолированном помещении, расположенном в оздоравливаемой зоне.

По достижении 45-дневного возраста цыплят вакцинируют инакгивированной вакциной.

Пух, перо, полученное от убоя условно здоровой птицы, просушивают в сушильных установках при температуре 85 — 90 °С в течение 15 мин. При от сутствии сушильной установки пух и перо дезинфицируют в любых приспособ ленных емкостях 3 %-ным горячим (45 — 50 °С) раствором формальдегида в те чение 30 мин и затем сушат.

В оздоравливаемом хозяйстве систематически выбраковывают и убивают некондиционных и малопродуктивных птиц, проводят аэрозольную дезинфек цию помещений в присутствии птиц, используя для этого высокодисперсные аэ розоли молочной кислоты или хлорскипи-дара. Карантин с хозяйства снимают после убоя всей неблагополучной по заболеванию птицы и проведения заключи тельной дезинфекции.

Вопросы для самопроверки:

1. Определение болезни.

2. Характеристика возбудителя.

3. Эпизоотологические особенности.

4. Клиническая картина болезни.

5. Патоморфологические изменения.

6. Лабораторная диагностика (серологические, вирусологические исследо вания и постановка биопробы на цыплятах и культуре клеток).

7. Дифференциальная диагностика.

8. Лечение птицы при гриппе.

9. Иммунитет при гриппе птиц.

10. Организация профилактических и оздоровительных мероприятий при гриппе птиц.

Цель занятия:

Пуллороз (Pullorosis) – инфекционная болезнь птиц отряда куриных, харак теризующаяся поражением кишечника, паренхиматозных органов и септицемией у цыплят, перерождением фолликулов яичника у взрослой птицы.

Возбудитель - Salmonella pullorum-gallinarum – относится к сальмонеллез ной группе, представляет собой палочку с закругленными концами длиной 2,5 мкм, шириной 0,3 - 0,5 мкм. В мазках-отпечатках можно обнаружить также грамотрицательные кокковидной или нитевидной формы бактерии. Возбудитель неподвижный, спор и капсул не образует, хорошо растет на обычном мясо пептонном агаре и в бульоне, в качестве элективных сред накопления использу ют бактоагар «Ж» и среду Эндо. Бактерии способны вызывать гибель 3 - дневных эмбрионов. Из лабораторных животных восприимчивы мыши, крысы, кролики. Наряду с высоковирулентными для цыплят штаммами в лабораториях часто выделяют слабовирулентные штаммы сальмонелл. Нередко, кроме S.

pullorum-gallinarum, от погибших птиц удается выделить S. typhimurium, S.

dublin и др.

Устойчивость во внешней среде значительная. При температуре 18 - 20°С возбудитель высушенной культуры сохраняется около 7 лет, в почве - 14 мес, в помете до 3 мес. В глубокой несменяемой подстилке возбудитель погибает через 10 дней.

Водные растворы кальцинированной соды (15 - 20%-ный), нафтализола ( - 6%-ный), щелочи (3 - 5%-ный), формальдегида (1%-ный), хлорной извести (20%-ный) быстро инактивируют возбудителя болезни. Имеются сведения о гу бительном действии аэрозолей формальдегида и метилбромида. Чувствитель ность бактерий к антибиотикам и другим препаратам различна, возможно при выкание их к антибиотикам при длительном применении.

Эпизоотологические данные. Пуллороз имеет широкое распространение, что обусловлено его эпизоотологическими особенностями. К заболеванию вос приимчивы различные виды птиц, но чаще всего болеют куры, индейки. Уста новлена большая предрасположенность к заболеванию цыплят мясных пород.

Заболеваемость колеблется от 2 до 60 %, смертность при остром течении болез ни без применения лечения достигает 80%. Водоплавающая птица имеет относи тельную устойчивость к заболеванию, однако у них встречается болезнь, вызы ваемая S. typhimurium. Острые вспышки пуллороза наблюдаются среди цыплят - 7 дней, в последующем случаи заболевания регистрируют в течение 14 дней.

Затем заболеваемость снижается, и у цыплят в возрасте от 20 до 45 дней отме чают лишь спорадические случаи хронического течения инфекции.

Из зараженных яиц при инкубации выводится цыплят 40 - 60%, остальные погибают на различных стадиях инкубирования. Источником возбудителя ин фекции являются больные птицы (особенно молодняк) и птицы сальмонеллоносители, выделяющие микробы во внешнюю среду с пометом и несущие инфицированные яйца. Помет может попадать в корм, воду, загрязнять клеточное оборудование. Высохшие частички инфицированного помета содер жатся в воздухе.

У цыплят различают конгенитальный (трансовариальный) пуллороз вы званный проникновением возбудителя в яйцах в период их ювания и прохожде ния по половому аппарату кур, и постнатальныи, когда. выведенный здоровый молодняк заражается при контакте с больными птицами или через инфициро ванную внешнюю среду.



Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |   ...   | 17 |
 


Похожие материалы:

«УЧРЕЖДЕНИЕ РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК УЧРЕЖДЕНИЕ РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК ИНСТИТУТ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИХ И ИНСТИТУТ МАТЕМАТИЧЕСКИХ ПРОБЛЕМ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРОБЛЕМ ПОЧВОВЕДЕНИЯ РАН БИОЛОГИИ РАН Материалы Национальной конференции с международным участием Математическое моделирование в экологии 1-5 июня 2009 г. г. Пущино Материалы конференции Математическое моделирование в экологии ЭкоМатМод-2009, г. Пущино, Россия УДК 57+51-7 ББК 28в6 М34 Ответственный редактор профессор, доктор биологических наук А.С. ...»

«1973 2003 Московский государственный университет им. М.В.Ломоносова Факультет почвоведения К 250-летию МГУ им. М.В.Ломоносова Кафедре биологии почв МГУ им. М.В.Ломоносова — 50 лет (1953 - 2003) Ответственный редактор проф. Д.Г.Звягинцев НИА-Природа Москва-2003 УДК 631.46 ББК Звягинцев Д.Г., Бабьева И.П., Бызов Б.А., Воробьева Е.А., Гузев В.С., Добровольская Т.Г., Зенова Г.М., Кожевин П.А., Кураков А.В., Лысак Л.В., Марфенина Т.Г., Мирчинк Т.Г., Полянская Л.М., Ре шетова И.С., Соина В.С., ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ ГРОДНЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Т.Н. ИЗОСИМОВА, Л.В. РУДИКОВА ПРИМЕНЕНИЕ СОВРЕМЕННЫХ ТЕХНО- ЛОГИЙ ОБРАБОТКИ ДАННЫХ В НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЯХ Монография Гродно 2010 3 УДК 004.6 Изосимова, Т.Н. Применение современных технологий обработки данных в научных исследова ниях : монография / Т.Н. Изосимова, Л.В. Рудикова. – Гродно : ГГАУ, 2010. – 408 с. – ISBN 978 985-6784-68-5 В монографии ...»

«Российская Академия наук Уфимский научный центр Институт истории, языка и литературы Ю.М. Абсалямов, Г.Б. Азаматова, А.В. Гайнуллина, М.И. Роднов, Л.Ф. Тагирова УФИМСКИЕ ПОМЕЩИКИ: типы источников, виды документации Уфа – 2013 1 УДК 947.930.221(470.57) ББК 63.3(2 Рос. Баш): 63.2 Р е ц е н з е н т ы: доктор исторических наук С.В. Голикова (Екатеринбург) кандидат исторических наук С.А. Фролова (Казань) Абсалямов Ю.М., Азаматова Г.Б., Гайнуллина А.В., Род нов М.И., Тагирова Л.Ф. Уфимские помещики: ...»

«NATURAL WATER IMPROVEMENT AND WASTEWATER TREATMENT УЛУЧШЕНИЕ КАЧЕСТВА ПРИРОДНЫХ ВОД И ОЧИСТКА СТОЧНЫХ ВОД Министерство образования и науки Республики Казахстан Казахский национальный аграрный университет Казахский национальный технический университет имени К.И. Сатпаева Таджикский технический университет имени М.С. Осими Т.И. ЕСПОЛОВ, Ж.М. АдИЛОВ, А.Т. ТЛЕУКУЛОВ, С.Б. АЙдАРОВА, Е.И. КУЛЬдЕЕВ, К.Т. ОСПАНОВ, д. дАВЛАТМИРОВ, В.А. ЗАВАЛЕЙ УЛУЧШЕНИЕ КАЧЕСТВА ПРИРОДНЫХ ВОД И ОЧИСТКА СТОЧНЫХ ВОД УДК ...»

«ЦЕНТР ЭКОНОМИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ XX МЕЖДУНАРОДНАЯ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ ДЛЯ СТУДЕНТОВ, АСПИРАНТОВ И МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К ФОРМИРОВАНИЮ КОНЦЕПЦИИ ЭКОНОМИЧЕСКОГО РОСТА: ТЕОРИЯ И ПРАКТИКА (18.04.2014г.) 1 Часть г. Санкт-Петербург – 2014г. © Центр экономических исследований УДК 330 ББК У 65 ISSN: 0869-1325 Современные подходы к формированию концепции экономического роста: теория и практика: 1 Часть (экономика и управление предприятиями, отраслями, комплексами, экономика ...»

«ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО ОБРАЗОВАНИЮ ГОУВПО МАРИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ АГРАРНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ О.Ю. ПЕТРОВ МЕДИКО-БИОЛОГИЧЕСКИЕ И НРАВСТВЕННЫЕ АСПЕКТЫ ПОЛНОЦЕННОГО ПИТАНИЯ Рекомендовано Учебно-методическим объединением вузов России по образованию в области технологии сырья и продуктов животного происхождения в качестве учебного пособия для студентов, обучающихся по направлению 260300 – Технология сырья и продуктов животного происхождения по специальностям: 260301 – ...»

«И В СЛАСТЭНСКИЙ ПЧЕЛЫ: мед и другие продукты И. В. Сластэнский ПЧЕЛЫ: мед и другие продукты ЛЕНИЗДАТ- 1987 Рецензент - кандидат биологических наук С. А. Аршавский Сластэнский И. В. С47 Пчелы: мед и другие п р о д у к т ы . — Л . : Лениздат, 1987160 с, ил. В книге рассказывается о жизни пчел, передовых приемах труда пчеловода, о том как создать пасеку и одновременно с увеличением мелосбора повышать урожаи с различных опыляемых растений и производство других ценных пчело продуктов. В одном из ...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Пермская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.Н. Прянишникова ИННОВАЦИОННОМУ РАЗВИТИЮ АПК – НАУЧНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ Сборник научных статей Международной научно-практической конференции, посвященной 80-летию Пермской государственной сельскохозяйственной академии имени академика Д.Н. Прянишникова (Пермь, 18 ноября 2010 года) ...»

«Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Иркутский государственный университет Биолого-почвенный факультет Н. А. Мартынова ХИМИЯ ПОЧВ: ОРГАНИЧЕСКОЕ ВЕЩЕСТВО ПОЧВ Учебно-методическое пособие 1 УДК 631.147(075.8) ББК 40.3я73 М29 Печатается по решению редакционно-издательского совета Иркутского государственного университета Рецензенты: Е. Г. Нечаева – д-р геогр. наук, профессор, зав. ...»

«Министерство внутренних дел Российской Федерации Краснодарский университет ОСНОВЫ ОПЕРАТИВНО-РОЗЫСКНОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ОРГАНОВ ВНУТРЕННИХ ДЕЛ УЧЕБНИК Под общей редакцией кандидата юридических наук, доктора философских наук, профессора Ю.А. Агафонова, доктора юридических наук, профессора Ю.Ф. Кваши Краснодар КрУ МВД России 2007 1 ББК 67.410.212 О 75 Рецензенты: Г.М. Меретуков, заведующий кафедрой криминалистики юридиче ского факультета Кубанского государственного аграрного университета доктор ...»

«АКАДЕМИЯ НАУК СССР СИБИРСКОЕ ОТДЕЛЕНИЕ Научно-популярная серия В. Г. МОРДКОВИЧ СТЕПНЫЕ ЭКОСИСТЕМЫ ИЗДАТЕЛЬСТВО НАУКА СИБИРСКОЕ ОТДЕЛЕНИЕ Новосибирск • 1982 УДК 577.4,574.9,212.6 * ОТ РЕДАКТОРА Мордкович В. Г. Степные экосистемы.— Новосибирск: Наука, 1982. Есть книги, посвященные лесам, пустыням, тундрам. Предлагаемая монография — о степях. В ней дано определение степной экосистемы, сделан обзор степей, очерчены пределы их различий в разных частях Земли. Объяснено, каким образом взаимодействуют ...»

«А.А. Васильев А.Н. Чащин ТЯЖЕЛЫЕ МЕТАЛЛЫ В ПОЧВАХ ГОРОДА ЧУСОВОГО: ОЦЕНКА И ДИАГНОСТИКА ЗАГРЯЗНЕНИЯ МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Пермская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.Н. Прянишникова А.А. Васильев А.Н. Чащин ТЯЖЕЛЫЕ МЕТАЛЛЫ В ПОЧВАХ ГОРОДА ЧУСОВОГО: ОЦЕНКА И ДИАГНОСТИКА ЗАГРЯЗНЕНИЯ Монография Пермь ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА УДК: ...»

«УДК 631.362.633.1 ББК Рецензенты: В.М. Дринча, д.т.н., зав.отделом механизации Россельхозакадемии Б.А. Сергеев, к.т.н., проф., заф. каф. сельхоз- машин БГСХА С.С. ЯМПИЛОВ С.С.Ямпилов Технологическое и техническое обеспечение ресурсо-энергосберегающих процессов очистки и сортиро вания зерна и семян.-Улан-Удэ: Изд-во ВСГТУ, 2003.-262с. ISBN ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЕ И ТЕХНИЧЕСКОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ РЕСУРСО-ЭНЕРГОСБЕРЕГАЮЩИХ ПРОЦЕССОВ ОЧИСТКИ Книга посвящена проблемам послеуборочной обработки зерна и семян. И ...»

«А.В. ЖИГЖИТОВ МЕХАНИЗАЦИЯ ПРОЦЕССОВ КОНСЕРВИРОВАНИЯ И ПРИГОТОВЛЕНИЯ КОРМОВ Улан-Удэ 2008 год Департамент научно-технологической политики и образования Министерства сельского хозяйства Российской Федерации ФГОУ ВПО “Бурятская государственная сельскохозяйственная академия им. В.Р. Филиппова” А.В. Жигжитов МЕХАНИЗАЦИЯ ПРОЦЕССОВ КОНСЕРВИРОВАНИЯ И ПРИГОТОВЛЕНИЯ КОРМОВ Учебно-методическое издание Улан-Удэ Издательство ФГОУ ВПО “БГСХА им. В.Р. Филиппова” 2008 год УДК 631. Т Печатается по решению ...»

«Российская академия сельскохозяйственных наук Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт электрификации сельского хозяйства (ГНУ ВИЭСХ) Московский государственный агроинженерный университет им. В.П. Горячкина (МГАУ) ФГНУ Российский научно-исследовательский институт информации и технико-экономических исследований по инженерно-техническому обеспечению АПК (ФГНУ РОСИНФОРМАГРОТЕХ) ЭНЕРГООБЕСПЕЧЕНИЕ И ...»

«УДК 631.172:631.353.2/.3 АНАЛИЗ И ОЦЕНКА ЭНЕРГО- С.В. Крылов, И.М. Лабоцкий, ЗАТРАТ СОВРЕМЕННЫХ МА- Н.А. Горбацевич, И.Ю. Сержанин, ШИН ДЛЯ ЗАГОТОВКИ ПРЕС- П.В. Яровенко, А.Д. Макуть, СОВАННОГО СЕНА И.М. Ковалева (РУП НПЦ НАН Беларуси по механизации сельского хозяйства, г. Минск, Республика Беларусь) Введение Рост цен на энергоносители привел к необходимости оценки энергозатрат, производимых сельскохозяйственными машинами при выполнении технологи ческих операций. Традиционно в отечественной ...»

«НАЦИОНАЛЬНАЯ АКАДЕМИЯ НАУК БЕЛАРУСИ Республиканское унитарное предприятие Научно-практический центр Национальной академии наук Беларуси по механизации сельского хозяйства Механизация и электрификация сельского хозяйства Межведомственный тематический сборник Основан в 1968 году Выпуск 43 В двух томах Том 2 Минск 2009 УДК 631.171:001.8(082) В сборнике опубликованы основные результаты исследований по разработке инновационных технологий и технических средств для их реализации при произ водстве ...»

«ISBN 5-86785-150-8 Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Московский государственный агроинженерный университет имени В.П. Горячкина П.А.Силайчев Методика планирования обучения в учреждениях профессионального образования Учебное пособие (издание третье, переработанное и дополненное) Москва 2010 ББК 74.560 УДК 377. 35 (07) С – 36 Рецензенты: доктор педагогических наук, профессор кафедры ...»






 
© 2013 www.seluk.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.