WWW.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

 

Pages:   || 2 | 3 | 4 |
-- [ Страница 1 ] --

II Международная

с 5 по 10 декабря 2011

школа-конференция молодых ученых

Генетика и селекция

растений, основанная на

современных

генетических

знаниях и технологиях

Москва-Звенигород

5-10 дек~ 0бря 2011

а~

Учреждение российской академии наук институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН

Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева

Московский Государственный Университет им. М.В. Ломоносова Совет молодых ученых ИОГен РАН 2-я Международная школа-конференция молодых ученых "Генетика и селекция растений, основанная на современных генетических знаниях и технологиях»

5 - 10 декабря 2011 г.

Тезисы докладов Москва, Звенигород – ~1~ УДК ББК Л Оргкомитет школы-конференции И.В. Голденкова-Павлова (председатель), Е.В. Дейнеко (заместитель председателя), А.А. Соловьев (заместитель председателя), Е.А.Калашникова, Ю.Л. Дорохов, Д.В. Политов, А.А. Поморцев, А.В. Рубанович, И.Н. Бердичевец (секретарь).

Локальный Оргкомитет Н.А. Боголюбова Х.Р. Шимшилашвили, В.С. Фадеев, А.О. Вячеславова, О.Н. Мустафаев, Тюрин А.А., Д.М. Шаяхметова Составление и верстка:

Х.Р. Шимшилашвили, Н.А. Боголюбова, И.Н. Бердичевец Генетика и селекция растений, основанная на современных генетических знаниях и технологиях – 2011: 2-я Международная школа-конференция молодых ученых;

5-10 декабря 2011 г.;

Москва-Звенигород, УРАН Институт общей генетики им. Н.И.Вавилова РАН: Тезисы докладов / Сост.: Х.Р.Шимшилашвили и др., - М.:

Цифровичок УДК ББК ©УРАН Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН ~2~

НАУЧНАЯ ПРОГРАММА

2-й Международной Школы-Конференции «Генетика и селекция растений, основанная на современных генетических знаниях и технологиях»

6 декабря, вторник Утреннее заседание 10.00 – 13. 10.00 Открытие школы-конференции Секция «Популяционная генетика дикорастущих растений»

(Научные кураторы секции: д.б.н. Д.В. Политов, д.б.н. А.В. Рубанович) 10.30. Ю. А. Янбаев (Башкирский государственный аграрный университет, Уфа)

МОЛЕКУЛЯРНЫЕ МАРКЕРЫ И ПРОБЛЕМЫ ОХРАНЫ РЕДКИХ И

ИСЧЕЗАЮЩИХ ВИДОВ РАСТЕНИЙ

11.30 – 12.00 – ПЕРЕРЫВ НА КОФЕ 12.00. Д. В. Политов (Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, Москва)

МОЛЕКУЛЯРНЫЕ МАРКЕРЫ И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ В ПОПУЛЯЦИОННОЙ

И ПРИРОДООХРАННОЙ ГЕНЕТИКЕ РАСТЕНИЙ

14.00. А.А. Синюшин (Кафедра генетики Биологического факультета МГУ им. М.В.

КОНТРОЛЬ РАЗВИТИЯ ЛИСТА У ГОРОХА ПОСЕВНОГО

14.20. Т. П. Кукина, Т. С. Фролова (Новосибирский государственный университет, Новосибирск) АНАЛИЗ БАВ МЕЖВИДОВОГО ГИБРИДА КЕДРОВЫХ

СОСЕН В СРАВНЕНИИ С РОДИТЕЛЬСКИМИ ВИДАМИ

14.40 – 18.00 – ЭКСКУРСИОННЫЕ МЕРОПРИЯТИЯ 19.00. А.А. Соловьев (кафедра генетики и биотехнологии РГАУ-МСХА, Москва)

АЛЛОПОЛИПЛОИДИЯ: ИСТОРИЯ, СОБЫТИЯ, МЕХАНИЗМЫ

Секция «Генетика и селекция культурных растений»

(Научные кураторы секции: д.б.н. А.А. Поморцев, д.б.н., профессор А.А. Соловьев) 09.30. В. П. Нецветаев Россельхозакадемии, Белгород) ГЕНЕТИКО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ

ФОРМИРОВАНИЯ КАЧЕСТВА ЗЕРНА МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ

10.30. Е. Д. Бадаева (Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, Москва)

ХРОМОСОМНОЕ МАРКИРОВАНИЕ В ГЕНЕТИКЕ И СЕЛЕКЦИИ

КУЛЬТУРНЫХ РАСТЕНИЙ

12.00. Е. К. Хлесткина (Институт цитологии и генетики СО РАН, Новосибирск)

ОСОБЕННОСТИ СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ ОРГАНИЗАЦИИ

ГЕНОВ РАСТЕНИЙ В АЛЛОПОЛИПЛОИДНОМ ГЕНОМЕ

14.00. Е.П. Размахнин (Институт Цитологии и Генетики СО РАН, Новосибирск)

ОТДАЛЕННАЯ ГИБРИДИЗАЦИЯ ПШЕНИЦЫ С ПЫРЕЕМ В СИБИРИ.

СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ

14.20. В.С. Тырнов

РАСТЕНИЙ: ГЕНЕТИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ И СЕЛЕКЦИОННЫЕ

ПЕРСПЕКТИВЫ

14.40. А.З. Багдалова, В.И. Жужукин (ФГОУ ВПО Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова, Саратов) ИСПОЛЬЗОВАНИЕ

ФАКТОРНОГО И КЛАСТЕРНОГО АНАЛИЗА В ИНТРОДУКЦИИ

СОРТООБРАЗЦОВ ВИГНЫ (VIGNA SAVI) В НИЖНЕМ ПОВОЛЖЬЕ

14.55. В. Бычкова Л., Эльконин (ФГБНУ «Российский научно-исследовательский и

ПЕРЕВАРИВАЕМОСТЬ ЗАПАСНЫХ БЕЛКОВ И КРАХМАЛА У ЛИНИЙ И

ГИБРИДОВ F1 ЗЕРНОВОГО СОРГО В УСЛОВИЯХ IN VITRO

15.10. Д.С. Демихова (Саратовский государственный университет имени Н.Г.

Чернышевского, Саратов) ПОЛИЭМБРИОНИЯ У РАСТЕНИЙ: СВЯЗЬ С

СИСТЕМАМИ РЕПРОДУКЦИИ

16.00. Х.Р. Мамедова, Э.Б. Алиев, Дж. М. Талаи (Азербайджанский научно

ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ ВЕГЕТАЦИОННОГО ПЕРИОДА ГЕНОФОНДА

КУКУРУЗЫ В УСЛОВИЯХ АЗЕРБАЙДЖАНА

16.15. Я.Р. Синдаровская, О.Й. Лозовая, Л.В. Юзвенко, Л.Ф. Диденко, Н.Я. Спивак (Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН Украины, Киев)

ВЛИЯНИЕ АКТИВНОСТИ РИБОНУКЛЕАЗ НА ВОСПРИИМЧИВОСТЬ

РАЗНЫХ СОРТОВ ГРЕЧИХИ К ВИРУСУ ОЖОГА ГРЕЧИХИ

16.30. О. Ю. Терещенко (Институт цитологии и генетики СО РАН, Новосибирск)

ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ И РОЛЬ В СТРЕССОУСТОЙЧИВОСТИ

ПРИЗНАКОВ АНТОЦИАНОВОЙ ОКРАСКИ У ИЗОГЕННЫХ ЛИНИЙ

МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ (TRITICUM AESTIVUM L.)

16.45. А.В. Гущин (ФГБОУ ВПО Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева, Москва) ОЦЕНКА КОЛЛЕКЦИИ ЯРОВОЙ

ТРИТИКАЛЕ НА УСТОЙЧИВОСТЬ К ЗАСУХЕ

18.00 – 19.00 – УЖИН 19.00. А.А. Поморцев (Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, Москва)

БИОХИМИЧЕСКИЕ И ДРУГИЕ МАРКЕРЫ В ГЕНЕТИЧЕСКИХ,

ПОПУЛЯЦИОННЫХ, ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЯХ И

СОРТОВОМ КОНТРОЛЕ ЯЧМЕНЯ

Е.В. Антоненко, Н.Л. Трухановец (ГНУ «Институт генетики и цитологии НАН Беларуси», Минск) НАСЛЕДОВАНИЕ ПАРАМЕТРОВ ПЫЛЬЦЕВОГО

ЭМБРИОГЕНЕЗА У TRITICUM AESTIVUM.

М.С. Баженов (Российский Государственный Аграрный Университет – МСХА имени К.А.

Тимирязева, Москва) ОТБОР НА УСТОЙЧИВОСТЬ К ПРОРАСТАНИЮ ЗЕРНА В

КОЛОСЕ У ТРИТИКАЛЕ С ПОМОЩЬЮ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ И

МОЛЕКУЛЯРНЫХ МАРКЁРОВ

М.Е. Баташова, В.Н. Тищенко (Научно-исследовательский селекционный центр Полтавской Государственной Аграрной Академии, Полтава) ИСПОЛЬЗОВАНИЕ

МЕТОДА ГЕНЕТИЧЕСКИХ КОРРЕЛЯЦИЙ ДЛЯ ПОИСКА ЦЕННЫХ

ГЕНОТИПОВ НА РАННИХ ЭТАПАХ СЕЛЕКЦИИ ОЗИМОЙ ПШЕНИЦЫ

К.В. Борис (Центр «Биоинженерия» Российской Академии Наук, Москва) RX ГЕНЫ

ВИДОВ SOLANUM: ПОЛИМОРФИЗМ CC-NBS-ARC ДОМЕНОВ

А.С. Бочко (Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского,

Саратов) КОЛИЧЕСТВО ХЛОРОПЛАСТОВ В КЛЕТКАХ ГАПЛОИДОВ И

ДИПЛОИДОВ КУКУРУЗЫ

Н.И. Гладких, М. В. Климушина (Российский Государственный Аграрный Университет – МСХА им. К.А. Тимирязева, Центр молекулярной биотехнологии, Москва) ОЦЕНКА

АЛЛЕЛЬНОГО СОСТОЯНИЯ ГЕНОВ WX В КОЛЛЕКЦИИ МЯГКОЙ ОЗИМОЙ

ПШЕНИЦЫ КНИИСХ ИМЕНИ П.П. ЛУКЬЯНЕНКО

М.В. Грицких, О.М. Федоренко (Учреждение Российской академии наук Институт биологии Карельского научного центра РАН, Петрозаводск) ГЕНЕТИЧЕСКИЕ

ОСНОВЫ АДАПТАЦИИ ARABIDOPSIS THALIANA (L.): ВРЕМЯ ЗАЦВЕТАНИЯ И

ПОТРЕБНОСТЬ В ЯРОВИЗАЦИИ

З.Е. Грушецкая, Г.В. Мозгова, В.А. Лемеш (Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, Минск) СОЗДАНИЕ ГЕНОМ-СПЕЦИФИЧЕСКИХ DCAPS-МАРКЕРОВ К

ГЕНАМ FAE1.1, КОНТРОЛИРУЮЩИМ СОДЕРЖАНИЕ ЭРУКОВОЙ КИСЛОТЫ В

СЕМЕНАХ РАПСА

Е. А. Домблидес, А.С. Домблидес (ГНУ ВНИИ селекции и семеноводства овощных культур, М.о., Одинцовский р-н, п/о Лесной городок) ИДЕНТИФИКАЦИЯ ТИПА ЦМС

У СТЕРИЛЬНЫХ ОБРАЗЦОВ СЕМЕЙСТВА BRASSICACEAE С

ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ПЦР

М. Емцева, Т. Ефремова (Институт цитологии и генетики СО РАН, Новосибирск)

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГЕНОТИПОВ У РАЗЛИЧНЫХ СОРТОВ МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ

ПО ГЕНАМ, КОНТРОЛИРУЮЩИМ ТИП РАЗВИТИЯ

И.А. Зубарева, Т.Н. Грибова, А.Н. Игнатов (Центр «Биоинженерия» РАН, Москва)

ИЗУЧЕНИЕ КОЛЛЕКЦИИ ИСХОДНОГО МАТЕРИАЛА РАСТЕНИЙ РОДА

BRASSICA КАК ИСТОЧНИКА ГЕНОВ УСТОЙЧИВОСТИ К ВИРУСУ МОЗАИКИ

ТУРНЕПСА (TUMV) Ю.Н. Кабаненко, Н.М. Красилова, О.Г. Силкова (Новосибирский Государственный Аграрный Университет, Новосибирск) ИЗУЧЕНИЕ ПШЕНИЧНО-РЖАНЫХ

ЗАМЕЩЕННЫХ ЛИНИЙ ПО ХРОМОСОМАМ РЖИ 1R В КАЧЕСТВЕ ДОНОРОВ

ХОЗЯЙСТВЕННО-ЦЕННЫХ ПРИЗНАКОВ В СЕЛЕКЦИИ МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ

В. И. Киняйкин, Ю. В. Сидорчук (Институт цитологии и генетики СО РАН, Новосибирск) ИЗУЧЕНИЕ ТУБУЛИНОВОГО ЦИТОСКЕЛЕТА В МАТЕРИНСКИХ

КЛЕТКАХ ПЫЛЬЦЫ РАСТЕНИЙ ТАБАКА (NICOTIANA TABACUM L.) ПРИ

УВЕЛИЧЕНИИ УРОВНЯ ПЛОИДНОСТИ

С.С. Кирикович, Е.В. Левитес (Институт цитологии и генетики СО РАН, Новосибирск)

НОВЫЙ ВЗГЛЯД НА СЕГРЕГАЦИЮ ПРИЗНАКОВ У РАСТЕНИЙ

Т.В. Никитинская, М.Н. Шаптуренко, Л.В. Хотылева (ГНУ «Институт генетики и цитологии НАН Беларуси», Минск) ОЦЕНКА ГЕНЕТИЧЕСКОЙ РАЗНОРОДНОСТИ

ТОМАТА (LYCOPERSICON ESCULENTUM) ДЛЯ СЕЛЕКЦИИ НА ГЕТЕРОЗИС

П. Портова, О. Зимина, Е. Алхимова (Институт Молекулярной Биологии и Генетики (SECALE CEREALE L.) А.С. Рубан (ФГБОУ ВПО Российский государственный аграрный университет - МСХА им. К.А.Тимирязева, Москва) ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ИЗУЧЕНИЕ КЛЕВЕРА

ПОДЗЕМНОГО (TRIFOLIUM SUBTERRANEUM L.)

Е.А. Снигирь (ВНИИССОК, Московская обл., Одинцовский р-н, пос. ВНИИССОК)

МУЛЬТИЛОКУСНЫЙ АНАЛИЗ ПОЛИМОРФИЗМА СОРТОВ ПЕРЦА C. ANNUM.

А.А. Тюрин, И.Н. Бердичевец, Н.А. Милюкова, А.О. Вячеславова (ФГБОУ ВПО Российский государственный аграрный университет - МСХА им. К.А.Тимирязева, Москва)

РОЛЬ ГЕНА LANCEOLATA В РАЗВИТИИ РАСТЕНИЙ ТОМАТА

М.А. Филюшин (Центр «Биоинженерия» Российской академии наук, Москва) АНАЛИЗ

ВНУТРИСОРТОВОГО ПОЛИМОРФИЗМА СОРТООБРАЗЦОВ ЛУКА-ПОРЕЯ

ALLIUM PORRUM

Р.А. Якимчук (Уманский государственный педагогический университет им. Павла Тычины, 20300, Умань) ЭФФЕКТИВНОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ

РАДИАЦИОННОГО ИЗЛУЧЕНИЯ ЗОНЫ ОТЧУЖДЕНИЯ ЧЕРНОБЫЛЬСКОЙ

АЭС ПРИ СОЗДАНИИ СЕЛЕКЦИОННО-ЦЕННОГО МАТЕРИАЛА

Секция «Трансгенные растения для фундаментальных и прикладных исследований»

(Научные кураторы секции: д.б.н. Е.В. Дейнеко, д.б.н. И.В. Голденкова-Павлова) 09.30. Е.В. Дейнеко (Институт цитологии и генетики СО РАН, Новосибирск)

ТРАНСГЕННЫЕ РАСТЕНИЯ КАК МОДЕЛИ ДЛЯ ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ

ИССЛЕДОВАНИЙ

10.30. Ю. В. Шелудько (Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН

РЕКОМБИНАНТНЫХ БЕЛКОВ В РАСТЕНИЯХ: ПРОБЛЕМЫ И РЕШЕНИЯ

11.30 – 12.00 – ПЕРЕРЫВ НА КОФЕ 12.00. Т. В. Комарова (НИИ физико-химической биологии им. А.Н.Белозерского МГУ,

Москва) РАЗРАБОТКА НОВЫХ ПОДХОДОВ СОЗДАНИЯ ТРАНСГЕННЫХ

РАСТЕНИЙ, ПЕРСПЕКТИВНЫХ ДЛЯ ФИТОБИОТЕХНОЛОГИИ

14.00. А.А. Казанцев, И.М. Герасименко, Е.М. Кищенко, М.Г. Мазур, Ю.В. Шелудько (Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН Украины, 03680,

Киев) СОЗДАНИЕ ГЕНЕТИЧЕСКИХ КОНСТРУКЦИЙ ДЛЯ

ТКАНЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ ЭКСПРЕССИИ ЧУЖЕРОДНЫХ ГЕНОВ В

РАСТЕНИЯХ

14.15. А.О. Вячеславова, И.Н. Бердичевец, Х.Р. Шимшилашвили, Т.В. Печковская, А.А. Тюрин, И.В. Голденкова-Павлова (Институт Общей Генетики им. Н.И.

КЛОНИРОВАНИЯ ЦЕЛЕВЫХ ГЕНОВ И РЕГУЛЯТОРНЫХ ЭЛЕМЕНТОВ С

ЦЕЛЬЮ ОБЕСПЕЧЕНИЯ СТАБИЛЬНОЙ И ЭФФЕКТИВНОЙ

ЭКСПРЕССИИ ГЕТЕРОЛОГИЧНЫХ ГЕНОВ В РАСТЕНИЯХ

14.30. Р.А. Комахин, В.В. Комахина, Н.А. Милюкова, Т.А. Левина, А.А. Жученко (ГНУ Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной

РЕКОМБИНАЦИИ У МЕЖСОРТОВЫХ И МЕЖВИДОВЫХ ГИБРИДОВ

ТОМАТОВ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ГЕНА БАКТЕРИАЛЬНОЙ

РЕКОМБИНАЗЫ recA Escherichia coli 14.45. Х.Р. Шимшилашвили, Н.О. Юрьева, Д.М. Шаяхметова, И.В. Голденкова Павлова (УРАН Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, Москва)

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ МОДЕЛИ ДЛЯ СОЗДАНИЯ РАСТЕНИЙ

УСТОЙЧИВЫХ К СТРЕССОВЫМ ФАКТОРАМ

15.00. Н.В. Гиляшова, И.В. Тарасенко, А.И. Таранов, А.П. Фирсов, Т.Ю. Митюшкина,

ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ТРАНСФОРМАЦИЯ РЯСКИ МАЛОЙ С ЦЕЛЬЮ

СОЗДАНИЯ СЪЕДОБНЫХ ВАКЦИН

15.15. Т. Ж. Хоанг, Г.Н. Ралдугина, Е.А. Калашникова (Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева, Москва) ОБРАЗОВАНИЕ

ХИМЕРНЫХ ПОБЕГОВ ПРИ ПОЛУЧЕНИИ ГЕНЕТИЧЕСКИ

ТРАНСФОРМИРОВАННЫХ РАСТЕНИЙ РАПСА

16.00. С.Р. Мурсалимов, Е.В. Дейнеко

ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ ТАБАКА

16.15. А.А. Балакина, Е.А. Калашникова, Ю.В Кунина (Институт проблем химической

ПОТЕНЦИАЛА ИЗОЛИРОВАННЫХ ЭКСПЛАНТОВ ЛЮПИНА

УЗКОЛИСТНОГО (LUPINUS ANGUSTIFOLIUS L.) IN VITRO

16.30. Т.Т. Доан, Е.А. Калашникова университет-МСХА имени К.А. Тимирязева, Москва) ВЛИЯНИЕ АУКСИНОВ НА

ОБРАЗОВАНИЕ МИКРОКЛУБНЕЙ ДИОСКОРЕИ НИПОНСКОЙ

(DIOSCOREA NIPPONICA M.) И ДИОСКОРЕИ КАВКАЗСКОЙ (DIOSCOREA

CAUCASIA L.) IN VITRO

16.45. А.А. Потрохов, Е.Ю. Кваско, Н.А. Матвеева (Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН Украины, Киев) СРАВНЕНИЕ ПОРАЖЕНИЕМ

ВИРУСОМ ТАБАЧНОЙ МОЗАЙКИ КОРНЕЙ И ЛИСТЬЕВ ТРАНСГЕННЫХ

РАСТЕНИЙ ЦИКОРИЯ CICHORIUM INTUBUS L С ГЕНОМ INF -2B

ЧЕЛОВЕКА ПОД. КОНЕСПЕЦИФИЧЕСКИМ ПРОМОТОРОМ MLL

Стендовые доклады секции (17.00 – 18.00) А.А. Балакина, Е.А. Калашникова, Ю.В. Кунина (Институт проблем химической физики РАН, Черноголовка) ВЛИЯНИЕ УСЛОВИЙ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ НА РИЗОГЕНЕЗ МИКРОПОБЕГОВ ЛЮПИНА УЗКОЛИСТНОГО (Lupinus angustifolius L.) in vitro С. Вакула, Т.В. Печковская, Н. Анисимова, Х.Р. Шимшилашвили, И.Н. Бердичевец, М.Н. Шаптуренко, Л.В. Хотылёва (ГНУ Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, Минск) МЕТОДИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ АГРОБАКТЕРИАЛЬНОЙ

ТРАНСФОРМАЦИИ РАСТЕНИЙ ТОМАТА ВЕКТОРОМ, СОДЕРЖАЩИМ DESA

ГЕН ЦИАНОБАКТЕРИЙ

К.В. Кабардаева, А.М. Камионская (Учреждение Российской академии наук Центр "Биоинженерия" РАН, Москва) ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РЕКОМБИНАНТНОЙ

СИСТЕМЫ CRE-LOXP ДЛЯ СОЗДАНИЯ БЕЗМАРКЕРНЫХ ТРАНСГЕННЫХ

РАСТЕНИЙ

Е. Кваско, Н. Матвеева (Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН Украины 03680, Киев) ПОЛУЧЕНИЕ ГЕРБИЦИДУСТОЙЧИВЫХ РАСТЕНИЙ

ЦИКОРИЯ CICHORIUM INTYBUS L. С ГЕНОМ ИТЕРФЕРОНА-2B ЧЕЛОВЕКА

Д.Б. Логинова, Е.В Дейнеко. (Учреждение Российской академии наук Институт цитологии и генетики СО РАН 630090, Новосибирск). НЕСТАБИЛЬНОСТЬ

ЭКСПРЕССИИ МАРКЕРНОГО ГЕНА NPTII У ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ

ТАБАКА: НАСЛЕДОВАНИЕ И СВЯЗЬ С МЕТИЛИРОВАНИЕМ ДНК

Ю.С. Лучакивская, А.Н. Майстренко, З.М. Олевинская (Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН Украины, Киев) НАСЛЕДОВАНИЕ И

ЭКСПРЕССИЯ ВВЕДЕННЫХ ГЕНОВ НЕОМИЦИНФОСФОТРАНСФЕРАЗЫ И

ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ИНТЕРФЕРОНА АЛЬФА-2B В ПОКОЛЕНИИ Т

ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ ТАБАКА

М.М. Мареай, Г.А. Шумкова, Н.В. Радионов, Г.Н. Ралдугина (Российский университет дружбы народов, Москва) ВЛИЯНИЕ ПОВЫШЕННЫХ КОНЦЕНТРАЦИЙ СОЛЕЙ

CuSO4 И ZnSO4 НА ТРАНСГЕННЫЕ РАСТЕНИЯ РАПСА (BRASSICA NAPUS L.) С

ГЕНОМ ТРАНСФАКТОРНОГО БЕЛКА OSMYB

М.В. Мокрякова, Г.В. Погорелко, С.А. Брускин (Институт общей генетики имени Н.И.Вавилова Российской Академии Наук, Москва) ТРАНСГЕННЫЕ РАСТЕНИЯ

ARABIDOPSIS THALIANA С ПОВЫШЕННОЙ ЭКСПРЕССИЕЙ ГЕНОВ

ПЕПТИДИЛ-ПРОЛИЛ ЦИС-ТРАНС ИЗОМЕРАЗ БОЛЕЕ УСТОЙЧИВЫ К

ФИТОПАТОГЕНАМ.

Д. А. Мурлякова, Е. А. Вертикова, В. Н. Акинина (Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова, 410034, Саратов) ИЗУЧЕНИЕ МЕТОДОВ

КУЛЬТИВИРОВАНИЯ IN VITRO КЛЕТОК И ТКАНЕЙ ТРИТИКАЛЕ

Д.В. Савчин, А.С. Панюш, Н.А. Картель (ГНУ «Институт генетики и цитологии НАН Беларуси», Минск) ОЦЕНКА УСТОЙЧИВОСТИ ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ

КАРТОФЕЛЯ С ГЕНОМ ГЛЮКОЗООКСИДАЗЫ К ФИТОФТОРОЗУ И ЧЕРНОЙ

НОЖКЕ Секция «Новые инструментальные и методические подходы в селекции и генетики (Научные кураторы секции: д.б.н., профессор Ю.Л. Дорохов, д.б.н., профессор Е.А.

10.00. Ф. А. Коновалов (Компания "Медико-диагностическая лаборатория", Москва)

МЕТОДЫ ИНТЕГРАЛЬНОГО АНАЛИЗА ГЕНОМА: ИЗБИРАТЕЛЬНОЕ

СЕКВЕНИРОВАНИЕ И СПЕКТРАЛЬНАЯ ВИЗУАЛИЗАЦИЯ КАРИОТИПА

11.00. В. Ю. Макеев (Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, Москва)

БИОИНФОРМАЦИОННЫЕ МЕТОДЫ В ГЕНОМИКЕ РАСТЕНИЙ.

ТЕХНОЛОГИЙ АНАЛИЗА БИОЧИПОВ И ГЕНОМНОГО

СЕКВЕНИРОВАНИЯ ILLUMINA ДЛЯ ИЗУЧЕНИЯ ГЕНЕТИЧЕСКОЙ

ИЗМЕНЧИВОСТИ ВАЖНЕЙШИХ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ

РАСТЕНИЙ

14.00. С.В. Виноградова (Учреждение Российской академии наук Центр "Биоинженерия" РАН, Москва) ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ ВИРУС-ЗАВИСИМОЙ

УСТОЙЧИВОСТИ ДЛЯ СОЗДАНИЯ ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ,

УСТОЙЧИВЫХ К РИЗОМАНИИ

14.15. А.А. Коротаева, П.Ю. Крупин (Российский Государственный Аграрный Университет – МСХА им. К.А. Тимирязева, Центр молекулярной биотехнологии,

Москва) ВЫЯВЛЕНИЕ НУКЛЕОТИДНЫХ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ

ГОМОЛОГИЧНЫХ ГЕНУ УСТОЙЧИВОСТИ К ЛИСТОВОЙ РЖАВЧИНЕ

14.30. И.В. Киров, Д.В. Романов (Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева, Москва) TYRAMIDE FISH - ЦЕННЫЙ

ИНСТРУМЕНТ ДЛЯ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ГЕНОМИКИ РАСТЕНИЙ

Ю.В. Шелудько, И.М. Герасименко, Д.М. Шаяхметова, Т.В. Печковская, И.В.

Голденкова-Павлова (Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН,

ИНСТРУМЕНТ ДЛЯ ЭФФЕКТИВНОГО ОТБОРА И АНАЛИЗА

ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ

15.00. Н.А. Яковин (Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева», Москва) РАЗРАБОТКА

ПРОГРАММНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ ДЛЯ АНАЛИЗА КАРИОТИПА ПОСЛЕ

ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНОГО ОКРАШИВАНИЯ И ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ IN

SITU ГИБРИДИЗАЦИИ

16.00. В. Чуб (кафедра физиологии растений Биологического факультета МГУ, Москва)

МОРФОГЕНЕЗ ЦВЕТКА: ГЕНЕТИЧЕСКИЙ И ПОЗИЦИОННЫЙ

КОНТРОЛЬ РАЗВИТИЯ

18.00. ЗАКРЫТИЕ ШКОЛЫ-КОНФЕРЕНЦИИ Отъезд участников школы-конференции из пансионата Предварительные результаты экологической селекции сортов яровой тритикале в Анатов Д.М., Садыкова Г.А., Амирова Л.А.

УРАН Горный ботанический сад ДНЦ РАН, 36700, Россия, г. Махачкала, ул. Гаджиева, 45, djalal@list.ru Важнейшая задача селекции тритикале - создание сортов с высокой урожайностью зерна и зеленой массы, для чего изучают исходный материал в конкретных почвенно климатических условиях и производят отбор наиболее лучших образцов по основным хозяйственно-ценным признакам (Лукашевич, 1981;

Бороевич, 1984).

Целью данной работы являлась оценка экологической пластичности исходного и селекционного материала методом индивидуального отбора в горных условиях.

Нами был проведен эколого-географический эксперимент по экотипам, суть которого сводилась к сравнению образцов тритикале в зависимости от происхождения семенного материала.

Для сравнительного анализа были отобраны 12 яровых сортообразцов тритикале дербентской репродукции выделившиеся на Гунибском плато по результатам 2008 года.

Семена наиболее продуктивных колосьев послужили родительской формой для получения нового материала на том же участке произрастания (1750 м, юго-западной экспозиции) отдельными рядками. Отбор был произведен по фенотипу. Соответственно были посеяны на том же участке и семена тех же образцов, но Дербентской репродукции. Статистическая обработка и интерпретация полученных данных осуществлялась по общепринятым статистическим методикам (Доспехов, 1981;

Лакин, 1980) с использованием пакета прикладных программ Statistica v. 5.5.

Наши исследования показали, что отбор по выделившимся колосьям в горных условиях ведет к улучшению популяций. Так у 8 образцов тритикале произошло улучшение показателей по сравнению с исходной популяцией. По двум сортообразцам не было выявленных существенных различий между популяциями, а у двух сортов продуктивнее оказались популяции, взятые с Дербента.

Главные различия между популяциями наблюдались по признакам высота растений и длина колоса. Селекционные популяции в целом оказались более высокорослыми и крупноколосыми. Удлиненность колосьев сказалась и на плотности колосьев, т.е. с более рыхлыми колосьями. Из других хозяйственно ценных признаков улучшения наблюдались по числу и массе семян, зато по выполненности зерна и массе 1000 зерен ожидаемого эффекта не наблюдалось. Двухфакторный дисперсионный анализ по степени влияния факторов межсортовые различия и происхождение семян показал высокую долю влияния фактора межсортовые различия, особенно на признаках число зерен (39,4%), длина колоса (30,8%), вес семян (28,0%). Фактор происхождение семян оказал влияние лишь на признаки длина колоса (30,2%) и число колосков (27,6%).

Проведенный сравнительный анализ сортообразцов тритикале в условиях Гунибского плато определил успешность экологической селекции методом индивидуального отбора по фенотипам и может служить основой для улучшения существующих и создания новых высокоурожайных сортов в горных условиях.

Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РФФИ № 09-04-96577.

Наследование параметров пыльцевого эмбриогенеза у Triticum aestivum.

Антоненко Е.В., Трухановец Н.Л.

ГНУ «Институт генетики и цитологии НАН Беларуси», 220072, Беларусь, Минск, ул.

Академическая, 27, E.Antonenko@igc.bas-net.by Метод культуры пыльников получил широкое использование в селекционных программах самых разных сельскохозяйственных культур. Однако массовому внедрению метода в селекционную практику препятствует низкая эффективность индукции пыльцевого эмбриогенеза, появление растений-альбиносов, анеуплоидия. Весьма перспективным для повышения эффективности метода представляется использование в схемах скрещивания высокоотзывчивых форм для передачи потомству требуемых свойств. Однако механизм наследования способности к индукции пыльцевого эмбриогенеза остается неясным.

Целью данной работы являлось изучение наследования параметров пыльцевого эмбриогенеза у мягкой яровой пшеницы.

Пыльники изолировали на стадии поздних одноядерных микроспор, высаживали на жидкую питательную среду С-17, выдерживали 7 дней в темноте при 31С, затем при 26С в течение 40 – 60 дней. Эмбриоиды, размер которых превышал 1 мм, пересаживали на твердую среду Мурашиге-Скуга. Дальнейшее культивирование проводили при температуре 22 ± 2єC на светоустановке при режиме 16 ч света (1500-2000 Лк) и 8 ч темноты. Растения-регенеранты высаживали в почву.

Проведен сравнительный анализ эффективности индукции пыльцевого эмбриогенеза у гибридов пшеницы первого поколения и их родительских форм, различающихся по способности к индукции пыльцевого эмбриогенеза. Результаты указаны в таблице 1.

Таблица 1 – Эффективность индукции пыльцевого эмбриогенеза мягкой яровой пшеницы.

Рассвет Примечание: * – из расчета на 100 пыльников, З – зеленые растения, А – альбиносные растения В результате проведенного исследования можно сделать вывод о том, что скрещивание генотипов пшеницы, характеризующихся высокой и низкой андрогенетической способностью в культуре пыльников, в ряде случаев приводит к передаче признака от лучшего родителя гибридам F1, что может свидетельствовать о доминировании признака высокой эмбриогенной способности. С другой стороны, существенные различия результатов реципрокных скрещиваний позволяют предположить, что на пыльцевой эмбриогенез у пшеницы частично оказывает влияние пластидный геном.

Использование факторного и кластерного анализа в интродукции сортообразцов Багдалова А.З.1, Жужукин В.И. ФГОУ ВПО Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова 410012 г. Саратов Театральная пл. 1, bagdalova2804@mail.ru ФГБНУ Российский научно-исследовательский и проектно-технологический институт сорго и кукурузы «Россорго» 410050 г. Саратов пос. Зональный, rossorgo@yandex.ru Вигна – ценная пищевая и кормовая культура. Выявлена исключительная хозяйственная ценность вигны для сельскохозяйственного производства засушливых регионов России.

Нижнее Поволжье относительно новый регион возделывания.

В 2011г. на опытном поле института высевали сортообразцы (всего 40) вигны коллекции ВИР. Фенологические наблюдения и учеты выполнены согласно Методики государственного сортоиспытания сельскохозяйственных культур (1989).

Кластерный анализ признаков вигны провели по минимуму евклидовых расстояний, а факторный – по методу главных компонент. В популяции изучались следующие признаки:

высота растений, высота прикрепления нижнего боба, число побегов ветвления 1 и 2-го порядков, число бобов на 1 растении, число семян в бобе, межфазный период «всходы– цветение», масса семян с 1 растения, масса 1000 семян. В модельной популяции вигны выявлено сильное варьирование морфологических параметров: коэффициент вариации изменяется в интервале 26,7-48,4%. Слабое варьирование выявлено только по продолжительности межфазного периода «всходы–цветение» (V=8,9%). Расчет парных коэффициентов корреляций позволил выявить сильную связь (r=0,816) признаков числа побегов ветвления 1 и 2-го порядков и числа бобов на 1 растении.

Веса переменных на компоненты выявили значительный вклад высоты растений в накапливаемую дисперсию 1-го гипотетического фактора. Следует отметить, что на первых факторов приходится 89,3% дисперсии. Причем на первый – 38,7%, второй – 17,6%, а третий – 13,9%. Шестой и последующие факторы вносят в дисперсию менее 5,0% и поэтому их вклад признается не существенным. Второй фактор в значительной мере определяется эффектом высоты прикрепления нижнего боба, а третий – массой семян с растения. Последовательная кластеризация признаков вигны позволила на 30-ом шаге итерации объединить их в 10 кластеров. Сформированы кластеры включающие до 9- сортообразцов разного эколого-географического происхождения, которые имеют высокую степень сходства по фенотипу. В опыте установлены сортообразцы, которые значительно отличаются и объединяются в кластеры только на завершающих итерациях, также установлена отдаленность сортообразцов вигны: к-638, к-12106, к-1361.

Таким образом, использование методов многомерной статистики позволяет оптимизировать критерии оценки исходного материала и рассматривать каждую исходную форму более объективно.

Отбор на устойчивость к прорастанию зерна в колосе у тритикале с помощью морфологических и молекулярных маркёров Баженов М.С.

Российский Государственный Аграрный Университет – МСХА имени К.А. Тимирязева, 127550, Россия, Москва, ул. Тимирязевская д. 49, mikhbaj@yandex.ru Предуборочное прорастание зерна в колосе у тритикале, вызываемое атмосферными осадками, является серьёзной проблемой почти во всех регионах возделывания этой культуры. Селекция считается основным методом борьбы с данным явлением.

Устойчивость к прорастанию зерна в колосе является полигенно контролируемым свойством, связанным, главным образом, с уровнем покоя семян на момент уборки. В связи с сильной зависимостью покоя семян от условий года и агротехники для повышения эффективности отбора представляется перспективным использование молекулярных маркёров.

Материалом для исследований послужили 6 гибридных комбинаций: 1 – 21759/ Александр, 2 – 21759/97 Fidelio, 3 – 21759/97 №2, 4 – Александр Fidelio, 5 – Александр №2, 6 – Александр Ставропольский 2. Среди родительских форм, участвовавших в скрещиваниях, сорт Fidelio отличался слабым покоем семян. Линия 21759/97 имеет замещение ржаной хромосомы 2R на хромосому 2D мягкой пшеницы, сорт Fidelio и линия 21759/97 обладают аллелем Rht-B1b (Rht1), обусловливающим гиббереллин-нечувствительную низкостебельность. Образцы 21759/97, Александр и Ставропольский 2 имеют аллель c гена Vp-1B, образец №2 – аллель a, причём последний, по литературным данным, связан с неустойчивостью к прорастанию в колосе. Сорт Fidelio имеет полиморфизм по гену Vp-1B. Нами было изучено влияние 2R/2D-замещения, определяемого с помощью ПЦР-маркёров, аллельного состояния гена низкостебельности Rht-B1, гена Vp-1B и состояния SSR-локусов Xwmc104, Xgwm155, Xbarc55, Xbarc170, Xbarc12 на покой семян озимой тритикале. Комбинации 1, 2, 6 изучались в течение двух лет (2010 и 2011 гг.), комбинации 3, 4, 5 – только в 2010 году. Уровень покоя семян у растений и линий данных гибридных комбинаций оценивался по динамике прорастания свежеубранного зерна в чашках Петри в течение 14 дней с расчётом доли проросших зёрен в каждый день и среднего времени прорастания пробы семян. Отмечалась выполненность зерна по пятибалльной шкале. Наличие 2R/2D-замещения было значимо связано с более глубоким покоем семян в комбинациях 2 и 3 во все годы испытания. При этом данное замещение существенно снизило продуктивность растений, и потому использование его в селекции неперспективно. В комбинации 1 в 2011 г. обнаружено существенное взаимодействие 2R/2D-замещения и гена Rht-B1, при котором наибольшее среднее время прорастания имеют линии без данного замещения, но с аллелем Rht-B1b. В комбинации более глубокий покой семян был ассоциирован с наличием аллеля Rht-B1b. В комбинации 5 отмечено более медленное прорастание в первые 3 дня семян с аллелем Vp-1Bc. Во всех гибридных комбинациях, но только в 2010 году, отмечена существенная положительная связь устойчивости к прорастанию с выполненностью зерна. В остальных случаях существенной связи динамики прорастания свежеубранного зерна с состоянием маркёров не было обнаружено.

В результате расчётов показано повышение эффективности отбора с использованием маркёров 2R/2D-замещения и аллельного состояния гена Rht-B1.

Изучение морфогенетического потенциала изолированных эксплантов люпина Балакина А.А.1, Калашникова Е.А.2, Кунина Ю.В. Институт проблем химической физики РАН, 142432, Московская область, г.

Черноголовка, просп. Академика Семенова, д.1, stasya.balakina@gmail.com Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева, 127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, д. 49, kalashnikova@timacad.ru Люпин узколистный является сложной культурой как для получения стабильной регенерации, так и для проведения генетических манипуляций. Как отмечают многие авторы, одной из проблем является высокая специфичность отдельных сортов к условиям культивирования in vitro, что в свою очередь обуславливает низкую воспроизводимость разрабатываемых протоколов. Получение новых сортов люпина узколистного с использованием методов современной биотехнологии невозможно без подбора оптимальных условий клонального микроразмножения для достижения максимальных коэффициентов размножения. Целью нашей работы являлась оптимизация условий культивирования изолированных органов и тканей люпина узколистного и изучение их морфогенетической активности в условиях in vitro. В качестве объектов исследования использовали сорта Миртан, Куршавель, Деко и Ладный.

Проведенные исследования показали, что наиболее предпочтительным первичным эксплантом являются пазушные почки, изолированные из 3-х суточных проростков люпина, что позволяет индуцировать развитие побегов с частотой до 93,3%. Максимальное количество микропобегов с одного экспланта было получено при культивировании их в присутствии 1,13 мкМ кинетина (1,7-2,9 шт.) или 2,25 мкМ 6-БАП (2,5-3,2 шт.).

Использование более высоких концентраций регуляторов роста вызывало витрификацию и изменения в морфологии микропобегов.

Было выявлено, что увеличение концентрации 6-БАП в питательной среде более 2,25 мкМ на этапе микроразмножения стимулировало развитие 9-15 микропобегов на эксплант.

Однако данная питательная среда оказалась неэффективной, поскольку регенеранты были витрифицированы и впоследствии погибали. При культивировании микрорастений люпина в течение двух пассажей в присутствии 6-БАП или кинетина в концентрации 2,25 мкМ также были выявлены изменения в морфологии побегов и снижение количества мериклонов. Для исследуемых генотипов люпина наиболее оптимальным на этапе микроразмножения является культивирование в присутствии 2,25 мкМ 6-БАП и 4,5 мкМ ИМК, что позволяет получить наибольшее количество микропобегов (4,2-4,8 шт.) без видимых изменений их морфологии, а также избежать негативного влияния регуляторов роста на органогенез.

Экспериментально установлено, что коэффициент размножения в течение 6 пассажей не изменялся и составил в среднем 3,80-4,95 шт. за один цикл размножения.

Таким образом, разработанный нами протокол регенерации может быть использован для получения трансгенных растений люпина узколистного методом агробактериальной трансформации меристем и их размножения.

Влияние условий культивирования на ризогенез микропобегов люпина узколистного Балакина А.А.1, Калашникова Е.А.2, Кунина Ю.В. Институт проблем химической физики РАН, 142432, Московская область, г.

Черноголовка, просп. Академика Семенова, д.1, stasya.balakina@gmail.com Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева, 127550, г. Москва, ул. Тимирязевская, д. 49, kalashnikova@timacad.ru Укоренение микропобегов и их последующая адаптация к почвенным условиям являются наиболее трудоемкими этапами, от которых зависит успех клонального микроразмножения. Основная проблема в получении укорененных микрорастений люпина узколистного связана в первую очередь с быстрым снижением способности их к ризогенезу в процессе культивирования.

Целью нашей работы являлась оптимизация условий ризогенеза в культуре in vitro люпина узколистного.

В качестве объектов исследования использовали сорта Миртан, Куршавель, Деко и Ладный. Экспланты культивировали при 16-часовом фотопериоде, освещенности люкс с использованием питательных сред по прописи Мурасиге-Скуга и Гамборга в присутствии различных регуляторов роста.

Было показано, что гормональный состав питательных сред на этапе микроразмножения не оказывает существенного влияния на способность микрорастений исследуемых генотипов к ризогенезу. Однако после двух пассажей способность микропобегов к корнеобразованию снижается, что подтверждено данными и других авторов.

При культивировании микрорастений в присутствии 2,4-Д и НУК наблюдали образование в базальной части побегов каллусной ткани без развития корней. Наилучший результат был получен при использовании в качестве ауксинов ИМК и ИУК в концентрации 4, мкМ. Увеличение концентраций ауксинов в питательной среде не вызывало существенных изменений в способности растений люпина к ризогенезу, и данный процесс не зависел от исследуемого генотипа. Однако для сортов Деко и Ладный не были выявлены статистически достоверные различия по этому показателю при использовании ИУК и ИМК в концентрации 4,5 мкМ.

Следует отметить, что полученные нами данные по ризогенезу (25,0-33,3 %) существенно превышали результаты проведенных ранее аналогичных исследований для регенерантов люпина узколистного (10-13,3 %). Кроме того, разработанный протокол позволяет получать укорененные регенеранты после 6 пассажей, в то время как в зарубежной литературе способность к ризогенезу после 6 пассажей не описана.

Использование метода генетических корреляций для поиска ценных генотипов на Баташова М.Е., Тищенко В.Н.

Научно-исследовательский селекционный центр Полтавской Государственной Аграрной Академии, 36003, Украина, Полтава, ул. Сковороды, 1/3, instagro@ukr.net, instagro@hotmail.com Озимая пшеница (Triticum aestivum L.) является важной зерновой культурой в большинстве стран, в том числе в России и в Украине. Поэтому разработка новых эффективных методов селекции данной культуры является актуальным вопросом. Наряду с современными генетическими методами не теряют своей ценности и методы классической селекции, развитием и совершенствованием которых занимается Научно исследовательский селекционный центр Полтавской Государственной Аграрной Академии. Так, в селекционной практике используется целый ряд классических селекционных индексов, таких как уборочный индекс, индекс аттракции, микрораспределений, и новых: полтавский индекс, индекс линейной плотности колоса, индекс продуктивного потенциала (Тищенко, Чекалин, 2005). Особое место в исследованиях занимает поиск корреляционных связей между признаками, и, особенно, индексами, у различных линий и сортов озимой пшеницы. Главной проблемой применения корреляционного анализа есть изменчивость величины корреляций в зависимости от условий выращивания. Ранее было показано, что корреляции между признаками у озимой пшеницы не стабильны по годам в зависимости от условий произрастания (Тищенко, Чекалин, 2005). Известно, что на значение фенотипической корреляции имеют влияние два основных фактора – генетический (аддитивное действие генов) и экологический (средовой). Соответственно, в фенотипической корреляции можно выделить генетический и средовой компоненты. Благоприятные условия произрастания усиливают средовой компонент, затрудняя тем самым выделение компонента генетического, в то время как наличие какого-либо лимитирующего фактора (засуха, засоленность, продолжительные низкие температуры, недостаточное азотное питание и др.) нивелирует средовую изменчивость, раскрывая тем самым генетический каркас признака.

В нашей селекционной работе в качестве лимитирующего фактора для снижения средовой изменчивости мы используем ранние и поздние сроки посева линий и сортов озимой пшеницы (1 сентября и 1 октября), а также метод задержки весенней вегетации путем снегования (метод В.Д. Мединца). Показано, что в большинстве случаев в селекционной практике наиболее эффективным является отбор не по прямым признакам, а по индексам.

Соответственно, вычисление корреляционных связей между индексами и признаками имеет решающее значение.

Таким образом, выявление корреляционных связей между индексами и признаками на фоне лимитирующего фактора дает возможность проводить эффективный отбор ценных генотипов на ранних этапах селекции.

Подобные исследования проводятся нами также в селекционной работе с горохом (Баташова, 2005) и другими культурами.

инструмент для эффективного отбора и анализа трансгенных растений Бердичевец И.Н.1, Шимшилашвили Х.Р.1, Синдаровская Я.Р.2, Шелудько Ю.В2, Герасименко И.М.2, Шаяхметова Д.М.1, Печковская Т.В.3, Голденкова-Павлова И.В. Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, 119991, Россия, Москва, Губкина 3, i_berdichevets@hotbox.ru Институт клеточной биологии и генетической инженерии НАН Украины, Украина, 03143, Киев, ул. Заболотного, ГНУ Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, 220072, Беларусь, Минск, Академическая 27.

При создании трансгенных растений исследователи сталкиваются с проблемой анализа первичных трансформантов на присутствие в геноме перенесенных генов. Простым и экономичным методом для этого является полимеразная цепная реакция. Однако для того, чтобы эффективно проанализировать трансформанты необходимо решить несколько задач:

оценить качество препарата выделенной геномной ДНК (по амплификации гена домашнего хозяйства), выявить наличие в геноме трансформантов последовательностей целевых генов, селективного гена, репортерного гена (если таковой имеется в экспрессионном векторе), последовательностей регуляторных элементов экспрессионных векторов и определить отсутствие агробактериальной контаминации. Для этого, обычно исследователи проводят ряд поочередных ПЦР с использованием праймеров и условий, подобранных к каждой из анализируемых последовательностей индивидуально, что требует определенных материальных и временных затрат. Для преодоления этого, нами ранее предложен новый перспективный инструмент для эффективного анализа трансформантов, позволяющий определять наличие в геномной ДНК растений последовательностей нескольких генов и регуляторных элементов одновременно – мультиплексная ПЦР.

В разработанную нами систему включены праймеры к последовательностям следующих генов: селективный ген (nptII), гены домашнего хозяйства различных видов растений (гены актина (act) табака, картофеля, томатов, NtGA2 табака, и др.), гены вирулентности Agrobacterium tumefaciens штаммов AGLO и GV3101 (virE, VirD), репортерный ген (licBM3), ряд целевых генов (desA, Cry3Amod, CYP11A1 и др.) и регуляторных элементов.

Праймеры к исследуемым последовательностям были подобраны таким образом, чтобы условия их амплификации были схожими, а амплифицированные фрагменты можно было эффективно разделять в агарозном геле. Также подобраны оптимальные соотношения каждого из праймеров системы и условия мультиплексной ПЦР, при которых происходит амплификация всех целевых последовательностей с одинаковой эффективностью.

Предложенная система мультилексной ПЦР успешно апробирована на модельных объектах (трансгенные растения табака и арабидопсиса) и на трансформантах сельскохозяйственно-важных культур (картофель, томаты, свекла, салат, клевер).

Продемонстрирована эффективность этой технологии для анализа наследования трансгенов в ряду поколений.

Работа выполнена при финансовой поддержке грантов РФФИ № 10-04-90054-Бел_а и РФФИ № 11-04-90904-моб_снг_ст.

Анализ полиморфизма ДНК сортов Triticum aestivum L.

Бобошина И.В., Боронникова С.В. 1, 1. ФГОУ ВПО «Пермский государственный национальный исследовательский университет», 614990, Россия, Пермь, ул. Букирева, 15, coccinela@yandex.ru, SVBoronnicova@yandex.ru 2. Естественнонаучный институт Пермского государственного национального исследовательского университета, 614990, Россия, Пермь, ул. Генкеля, 4, coccinela@yandex.ru, SVBoronnicova@yandex.ru Пшеница - ценнейшая продовольственная культура, которая занимает ведущее место в зерновом балансе нашей страны. Её продуктивность зависит от реализации генетически заложенных потенций урожайности, а также влияния конкретных погодно-климатических условий (Моргун, 2010). В последние годы активно разрабатываются методы молекулярно-генетического маркирования, которые могут дать необходимую информацию о связи признака с определенной последовательностью нуклеотидов (Гришин, 2010). Нами была разработана система ДНК-маркеров на основе ISSR–метода (Inter-Simple Sequence Repeats, Zietkiewicz at all., 1994) для выявления генетического полиморфизма и молекулярного маркирования 4 сортов Triticum aestivum L., районированных в Пермском крае. Для выделения ДНК использовали методику А. Торрес и др. (1993). Использовали пять ISSR-праймеров (ЗАО «Синтол»). Продукты амплификации разделяли путем электрофореза в 1,7% агарозном геле в 1х ТВЕ буфере. Гели окрашивали бромистым этидием и фотографировали в проходящем УФ-свете в системе гель-документации Gel Doc XR («Bio-Rad», USA). Определение длин фрагментов ДНК проводили с использованием программы «Quantity One» и маркера молекулярного веса (100 bp +1.5 + Кb DNA Ladder, «ООО-СибЭнзим-М», Москва). Один ISSR-праймер в среднем амплифицировал 8 фрагментов ДНК. Число амплифицированных фрагментов ДНК варьировало от 5 (праймер М3) до 12 (праймер М1). Процент полиморфных фрагментов ДНК с праймером М1 составил 85,4 %, с М3 – 75,0 %, с М27 – 85,3 %, с Х10 – 72,0 %, с Х11 – 90,6 %. Средний процент полиморфизма, выявленного ISSR-методом, в 4-х сортах T. aestivum составил 82,3 %.

Результаты данной работы подтвердили возможность использования ISSR-метода для анализа полиморфизма ДНК различных сортов T. aestivum.

1. Моргун В.В., Киризий Д.А., Шадчина Т.М. Экофизиологические и генетические аспекты адаптации культурных растений к глобальным изменениям климата // Физиология и биохимия культ. растений. – 2010. – Т.42, №1. – С.3-23.

2. Гришин, С.Ю., Артюхова А.В., Заякин В.В., Нам И.Я. Разработка метода генетических маркеров люпина для использования в селекционном процессе // Современная биотехнология: фундаментальные проблемы, инновационные аспекты в биотехнологии:

материалы международной конференции молодых ученых. Брянск, 26 апреля – 8 мая г. – Брянск, 2010. – С. 37–43.

3. Zietkiewicz E., Rafalski A., Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification // Genomics, 1994. V. 20. P. 176–183.

4. Torres A.M, Weeden N.F., Martin A. Linkage among sozyme, RFLP and RAPD markers in Vicia faba // Theor Appl. Genet. 1993. V.5. P. 937–945.

Rx гены видов Solanum: полиморфизм CC-NBS-ARC доменов Борис К.В.

Центр «Биоинженерия» Российской Академии Наук, 117312, Россия, Москва, пр-т летия Октября, 7, docboris@mail.ru Ген Rx1 определяет устойчивость к X вирусу картофеля и относится к CC-NBS-LRR подклассу R-генов устойчивости растений.

Последовательность Rx1 имеет ряд консервативных участков, соответствующих областям, кодирующим функциональные белковые домены, присутствующие в последовательностях многих R-белков. Основными считаются СС и NBS-ARC домены.

CC домен выполняет сигнальные функции. NBS домен является нуклеотид-связывающим.

ARC домен подразделяют на 2 субдомена: ARC1 является белок-белок связывающим, а ARC2 участвует в активации гена устойчивости в присутствии элиситора. Внутри NBS ARC домена выделяют ряд консервативных мотивов: таких как P-петля, киназа-2, киназа 3, GxP, RNBS-D, MHD, а в области СС домена мотив EDMVD.

Целью данной работы было изучение полиморфизма последовательностей CC-NBS ARC доменов у гомологов Rx1 гена культивируемых и дикорастущих видов картофеля с различным статусом устойчивости к Х вирусу, от иммунных до крайне восприимчивых.

Были разработаны праймеры для амплификации последовательностей кодирующих CC-NBS-ARC домены, у образцов 11 видов картофеля (S.tuberosum, S.acaule, S.chacoense, S.leptophyes, S.marinasense, S.microdontum, S.okadae, S.berthaultii, S.brevicaule, S.gourlayi, S.megistacrolobum). Полученные ПЦР продукты были клонированы и секвенированы.

Всего было получено и проанализировано 18 последовательностей.

Длинна полученных последовательностей, включавших CC-NBS-ARC домены варьировала от 1079 п.н. (S.tuberosum) до 1423 п.н. (S.chacoense). Общий уровень полиморфизма последовательностей составил 14%. В пределах изученных фрагментов были определены все характерные консервативные мотивы. Особый интерес представляли нуклеотидные замены в последовательностях данных мотивов, так как показано, что они могут приводить к изменению функций белка. Всего в последовательностях консервативных мотивов CC-NBS-ARC доменов было выявлено 18 SNPs, 12 из которых приводили к 4 синонимичным и 8 не синонимичным аминокислотным заменам. Наиболее консервативными оказались мотивы EDMVD, и киназы-2 в пределах которых аминокислотных замен выявлено не было.

В некоторых клонированных последовательностях образцов S. tuberosum и S.

leptophyes были выявлены преждевременные стоп-кодоны. Так же у ряда изученных клонов были обнаружены делеции. Например, у клонов образца S. microdontum выявлена делеция 12 п.н. в последовательности СС домена, а у клонов образца S. tuberosum протяженные делеции (341 и 91 п.н.) захватывали области мотивов киназы-2 и киназы-3.

Наличие протяженных делеций и стоп-кодонов может говорить о присутствии среди клонированных последовательностей не только фрагментов функциональных гомологов Rx1, но и псевдогенов.

Работа выполнена при поддержке ГК 16.512. Количество хлоропластов в клетках гаплоидов и диплоидов кукурузы Бочко А.С.

Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского, 410012, Россия, Саратов, Астраханская 83, alena.bochko@mail.ru Хлоропласты являются важной органеллой клеток растений, обеспечивающей фотосинтез и в конечном итоге, биопродуктивность видов и урожайность возделываемых культур. Имеются данные, что у ряда культур число хлоропластов зависит от уровня плоидности. В настоящее время показано, что селекцию наиболее эффективно можно вести на гаплоидном уровне, так как уже в первом поколении проявляется действие всех генов, как доминантных, так и рецессивных. Целью данной работы было – изучить различия клеток по числу хлоропластов в зависимости от уровня плоидности у кукурузы.

Исследования проводились на партеногенетических линиях кукурузы АТ-3, АПО 3(1), АПО-3(2) и гибридах между этими и амфимиктичными линиями КМС, АТТМ. В работе использовались гаплоидные и диплоидные проростки на стадии третьего листа, которые росли в кюветах на фильтровальной бумаге. Отбор на стадии проростков, до их посадки в грунт, позволяет увеличить объем работы, уменьшить ее трудоемкость и ускорить селекционный процесс. Для исследования использовали 5 мм первого листа каждого растения, отрезанного от его верхушки. Затем из этого участка листа готовился однослойный препарат и далее изучался под световым микроскопом.

Установлено, что, независимо от плоидности, минимальное количество хлоропластов в клетках проростков равно 6, максимальное – 30. Для удобства анализа все значения хлоропластов были разделены на пять классов: 6 – 10, 11 – 15, 16 – 20, 21 – 25 и 26 – 30. У всех растений наиболее часто встречаются классы 16 – 20 (26 – 37 % для n и 30 – 45 % для 2n) и 21 – 25 (31 – 43 % для n и 26 – 42 % для 2n). Сравнительно небольшое (в пределах 2 – 5 %) количество клеток имеет 6 – 10 хлоропластов, только в клетках гаплоидов линии АПО-3(1) их минимальное количество было 11. Класс хлоропластов 26 – 30 можно использовать как косвенный диагностический признак для определения плоидности, т.к. этот класс в клетках гаплоидов встречается чаще, чем в клетках диплоидов. Например, у линии АТ-3 он встречается чаще в 3,6 раза, у АПО-3(1) – в 13,4 раза, у АПО-3(2) – в 7,9 раза, у АТ-1ЧКМС – в 3,6 раза, у АТ3ЧАТТМ – в 6,5 раза.

Важной особенностью является то, что гаплоиды и диплоиды у кукурузы, по сравнению друг с другом, могут иметь клетки с большим, меньшим или равным числом хлоропластов. Является ли это следствием широко распро-странённой полиплоидизации соматических клеток, или это обычный уровень изменчивости данного признака, обусловленный другими, в том числе, разными причинами, подлежит специальным исследованиям.

Полученные данные могут быть полезными при дальнейшей разработке методов выявления гаплоидов, селекции и биотехнологических операций на гаплоидном уровне, при изучении вопросов о влиянии дозы генов, отвечающих за фотосинтетические процессы.

Работа выполнена при поддержке гранта № 2.2.3.1/11144 Аналитической ведомственной целевой программы Минобрнауки РФ «Развитие научного потенциала высшей школы».

Перевариваемость запасных белков и крахмала у линий и гибридов F1 зернового Бычкова В.1, Эльконин Л. ФГБНУ «Российский научно-исследовательский и проектно-технологический институт сорго и кукурузы», 410050, Россия, Саратов, bychkova_vv@list.ru ГНУ «Научно-исследовательский институт сельского хозяйства Юго-Востока Россельхозакадемии», 410010, Россия, Саратов, Тулайкова, д.7, lelkonin@gmail.com Улучшение питательной ценности сортов и гибридов зерновых культур относится к числу важнейших задач селекции. В этой связи создание линий и гибридов с высоким содержанием и перевариваемостью запасных белков и крахмала, знание закономерностей наследования этих параметров имеют первостепенное значение. Для решения этих задач исследовали перевариваемость запасных белков и крахмала в условиях in vitro у трех гибридов F1 зернового сорго (А2 АГС/Топаз, А2 О-1237 / Пищевое 614, А2 Судзерн светлый/ Топаз) и их родительских линий (А2 АГС, Топаз, А2 О-1237, Пищевое 614, А Судзерн светлый). У этих же линий и гибридов проводили анализ содержания общего крахмала.

Среди изученных образцов наиболее высокий уровень перевариваемости белков обнаружен у линий Топаз (42.5%) и АГС (48.0%). В то же время, Судзерн светлый и сорт Пищевое 614 характеризовались значимо более низкими показателями: 66.5% и 60.0%. У гибрида F1 между линиями с контрастными значениями этого признака (А2 Судзерн светлый/ Топаз) наблюдалось промежуточное значение показателя перевариваемости белка (59.50%). У гибрида, полученного от скрещивания двух линий со сравнительно высокой перевариваемостью (А2 АГС/ Топаз), уровень перевариваемости оказался значимо ниже (61.0%), т.е., наблюдался отрицательный гетерозис (-35%). Полученные данные свидетельствуют, что высокий уровень перевариваемости запасных белков у сорго является рецессивным признаком, и у изученных линий сорго, возможно, контролируется неаллельными генами.

Максимальное содержание общего крахмала было отмечено у линий А2 АГС (76.51%) и Топаз (82.17%), при этом у гибрида на их основе уровень крахмала значимо снизился (на 13.5-19.5%). Примечательно, у линии Топаз уровень перевариваемого, т.е. биологически доступного крахмала, был наименьшим (55.7%), в то время как, у Пищевого- содержание перевариваемого крахмала несколько превышало содержание общего крахмала. Такое превышение, возможно, обусловлено, наличием у Пищевого- полностью (100%) перевариваемого крахмала, а также высвобождением глюкозы в результате частичного гидролиза гликопротеидов. В гибридных комбинациях, доля перевариваемого крахмала была значимо выше, чем у родительских линий, за исключением А2 О-1237/ Пищевое 614. Наиболее высокое содержание перевариваемого крахмала выявлено у гибрида А2 АГС/ Топаз (59.6 %).

Полученные данные свидетельствуют, что в отличие от перевариваемости запасных белков, уровень перевариваемости крахмала у гибридов F1 проявляет положительный гетерозис и возрастает при скрещивании высококрахмалистых родительских форм.

Методические аспекты агробактериальной трансформации растений томата Вакула С.1, Печковская Т.1 Анисимова Н.1, Шимшилашвили Х.2, Бердичевец И.2, Шаптуренко М.Н.1, Хотылёва Л.В. ГНУ Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, 220072, Беларусь, Минск, Академическая 27, svettera@yandex.ru ІУРАН Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, 119991, Россия, Москва, Губкина 3, i_berdichevets@hotbox.ru В настоящее время для создания устойчивых к фитопатогенам растений активно используют методы трансгенеза, которые позволяют преодолеть ограничения традиционной селекции путём введения в геном реципиента желаемых генов.

Целью настоящей работы явилось создание растений томата, обладающих комплексной устойчивостью к заболеваниям, за счёт экспрессии гетерологичного гена DesA цианобактерий.

Для агробактериальной (штамм GV3101) трансформации, использовали экспрессионный вектор pBISN-desA-licBM3, несущий ген ацил-липидной десатуразы (desA), катализирующей образование двойной связи в 12 положении моноеновых жирных кислот, созданный и любезно предоставленный группой геномики растений ИОГен РАН.

В процессе исследования проведена трансформация 490 семядольных и гипокотильных эксплантов 7 селекционных линий томата (Solanum lycopersicum L.) характеризующихся различной степенью восприимчивости к грибным патогенам. В результате 135 регенерантов высажено на селективную среду (MSЅ, Km-50, cf-100), 17 - в условия in vivo. Показано, что для сохранения баланса между жизнеспособностью эксплантов томата и ингибированием роста агробактерии наиболее эффективно культивирование на MS-среде с константным содержанием антибиотика цефотаксим в концентрации 500 мг/л и отложенной селекцией на канамицине (50 мг/л).

При проведении дисперсионного анализа выявлено достоверное влияние на регенерационную способность генотипа образца и типа экспланта, тогда как эффект способа трансформации (суспензия / газон) несущественен. Высокими показателями жизне- и регенерационной способности среди изученных образцов характеризуются семядольные экспланты линий Mk1 и Евро F1. Регенерационная способность Mk1 при жизнеспособности 79% составила 121,6%. В целом использование для агробактериальной трансформации семядольных эксплантов было в 2 и более раза (в зависимости от генотипа) эффективнее, чем гипокотильных.

В настоящее время проводится ДНК- идентификация трансформированных растений томата, несущих гетерологичный ген DesA по маркёрам act (томата), T-nos, desA и licBM3.

Работа выполнена при поддержке грантов БРФФИ №Б10Р-146, РФФИ 10-04-90054-Бел_а и РФФИ 11-04-90904-моб_снг_ст Использование технологии вирус-зависимой устойчивости для создания трансгенных Виноградова С.В.

Учреждение Российской академии наук Центр "Биоинженерия" РАН, г. Москва, 117312, пр-т 60-летия Октября, д. 7, кор.1, sveta2506@bk.ru Наиболее перспективные генно-инженерные подходы создания устойчивых к вирусам растений основываются на использовании механизма посттранскрипционного умолкания генов (PTGS) и экспрессии гена вирусного белка оболочки (БО). Целью работы было изучение 3’-нетранслируемой области (3’-НТО) вируса некротического пожелтения жилок свеклы (Beet necrotic yellow vein virus, BNYVV) в качестве индуктора патоген-зависимой устойчивости к ризомании на модельных растениях Nicotiana benthamiana.

Для создания трансгенной устойчивости к BNYVV были получены плазмидные конструкции pBI_BNYVVср и pBI_BNYVVsil, содержащие под контролем 35S промотора кДНК гена БО BNYVV и 3’-НТО РНК2 генома BNYVV в смысловой и антисмысловой ориентации, разделенные интроном гена кукурузы ubi1. В результате вырезания интрона in vivo образуется двунитчатая форма вирусной 3’-НТО, которая может являться оптимальной мишенью для PTGS. Плазмиды несли под отдельным 35S промотором селективный ген bar, обеспечивающий устойчивость к фосфинотрицину.



Pages:   || 2 | 3 | 4 |
 




Похожие материалы:

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ БРЕСТСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ Научно-технические проблемы водохозяйственного и энергетического комплекса в современных условиях Беларуси СБОРНИК МАТЕРИАЛОВ МЕЖДУНАРОДНОЙ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ 21–23 сентября 2011 года ЧАСТЬ II Брест 2011 УДК [628.1.034+620.9](476) Рецензенты: Богдасаров М.А. – д.г.-м.н., доцент, зав. кафедрой географии Беларуси БрГУ им. А.С. Пушкина. Михневич Э.И. – д.т.н., ...»

«КОМИТЕТ ПО ПРИРОДНЫМ РЕСУРСАМ ЛЕНИНГРАДСКОЙ ОБЛАСТИ О состоянии окружающей среды в Ленинградской области Санкт-Петербург 2012 УДК [502.1 (042.3)+504.06+503.03] ББК 67.407 (ЭО) Редакционная коллегия: Эглит А. А. – председатель редакционной коллегии. Орлова Н. В., Остриков К. В., Власов А. В., Скворцов В. М., Мурашко И. И., Силина Н. И., Попов В. Л., Куприянов И. Б, Стулов Ф. Н. О состоянии окружающей среды в Ленинградской области. — СПб., 2012. — 320 с.: ил. ISBN 978-5-9904195-1-3 ...»

«СЕКЦИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ И БИОЛОГИЧЕСКИХ НАУК УДК 502.4 Науч. сотрудник Д.Ш. АКИМЖАНОВ (КазНАУ) Науч. сотрудник А.Н. ФИЛИМОНОВ (Алакольский заповедник) РАСПРОСТРАНЕНИЕ И ЧИСЛЕННОСТЬ КУДРЯВОГО ПЕЛИКАНА В АЛАКОЛЬ - САСЫККОЛЬСКОЙ СИСТЕМЫ ОЗЕР Кудрявый пеликан принадлежит к числу глобально угрожаемых видов, у ко торых в течение двадцатого столетия произошла масштабная депрессия числен ности, вызванная уменьшением обводненности засушливых территорий Евразии, как в результате естественной ...»

«Химия биологически активных веществ НАЦИОНАЛЬНЫЙ ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМ. Н.Г. ЧЕРНЫШЕВСКОГО Министерство образования и науки Российской Федерации Российский фонд фундаментальных исследований ФГБОУ ВПО Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского Химия биологически активных веществ ХимБиоАктив-2012 Межвузовский сборник научных трудов 2012 г УДК [541+542] ББК Х40 Х40 Химия биологически активных веществ: Межвузовский сборник научных трудов ...»

«РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК ГОСУДАРСТВЕННОЕ НАУЧНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВСЕРОССИЙСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ТАБАКА, МАХОРКИ И ТАБАЧНЫХ ИЗДЕЛИЙ ИННОВАЦИОННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ И РАЗРАБОТКИ ДЛЯ НАУЧНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВА И ХРАНЕНИЯ ЭКОЛОГИЧЕСКИ БЕЗОПАСНОЙ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ И ПИЩЕВОЙ ПРОДУКЦИИ Сборник материалов Всероссийской научно-практической конференции 3 июня – 8 июля 2013 г. г. Краснодар 2013 1 УДК 664.001.12/.18 ББК 65.00.11 И 67 Инновационные исследования и ...»

«РОССИЙСКИЙ ФОНД ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РЕСПУБЛИКИ МАРИЙ ЭЛ КОМИТЕТ ЭКОЛОГИИ И ПРИРОДОПОЛЬЗОВАНИЯ Г. ЙОШКАР-ОЛЫ ФГБОУ ВПО МАРИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ НАЦИОНАЛЬНЫЙ ПАРК МАРИЙ ЧОДРА ФГУ ГПЗ БОЛЬШАЯ КОКШАГА МАРИЙСКОЕ ОТДЕЛЕНИЕ ОБЩЕСТВА ФИЗИОЛОГОВ РАСТЕНИЙ ПРИНЦИПЫ И СПОСОБЫ СОХРАНЕНИЯ БИОРАЗНООБРАЗИЯ МАТЕРИАЛЫ V Международной научной конференции 9–13 декабря 2013 года Часть II Йошкар-Ола 2013 ББК 28.0:20.1 УДК 57:502.172 П 75 Ответственные редакторы: ...»

«Министерство образования и науки Российской Федерации Совет молодых ученых и специалистов Тамбовской области Международная академия теории и практики организации производства Российская академия естественных наук Фонд содействия развитию малых форм предприятий в научно-технической сфере ФГБОУ ВПО Тамбовский государственный технический университет ОРГАНИЗАЦИОННЫЕ АСПЕКТЫ УПРАВЛЕНЧЕСКОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ: ТЕОРИЯ И ПРАКТИКА (статус мероприятия - международный) Научно - практическая конференция ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ ГРОДНЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Перспективы развития высшей школы МАТЕРИАЛЫ IV МЕЖДУНАРОДНОЙ НАУЧНО-МЕТОДИЧЕСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ Гродно УО ГГАУ 2011 УДК 378(06) ББК 74.58 П 26 Редакционная коллегия: В.К. Пестис (ответственный редактор), А.А. Дудук (зам. ответственного редактора), А.В. Свиридов, С.И. Юргель. Перспективы развития высшей школы : материалы IV П26 Международной науч.-метод. ...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное научное учреждение РОССИЙСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ПРОБЛЕМ МЕЛИОРАЦИИ (ФГБНУ РосНИИПМ) ПУТИ ПОВЫШЕНИЯ ЭФФЕКТИВНОСТИ ОРОШАЕМОГО ЗЕМЛЕДЕЛИЯ Сборник научных трудов Выпуск 45 Новочеркасск Геликон 2011 УДК 631.587 ББК 41.9 П 901 РЕДАКЦИОННАЯ КОЛЛЕГИЯ: В. Н. Щедрин (ответственный редактор), Г. Т. Балакай, С. М. Васильев, Г. А. Сенчуков, Т. П. Андреева (секретарь). РЕЦЕНЗЕНТЫ: В. И. Ольгаренко – ...»

«ПравительствоОмской области Министерство промышленной политики, транспорта исвязи Омской области ДОКЛАД О СОСТОЯНИИ И ОБ ОХРАНЕ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ ОМСКОЙ ОБЛАСТИ В 2006 ГОДУ Омск 2007 1 УДК 502.7(571.13) ББК 20.1(2Р-4Ом) О 13 О 13 Доклад о состоянии и об охране окружающей среды Омской области в 2006 году / М-во промышл. политики, транспорта и связи Ом. обл. – Омск: ЗАО Манифест, 2007. – 288 с.: ил. + 3 отд. л. карт. [12 с.]. Редакционно-издательский совет: А. М. Луппов (председатель), А. А. ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК РОССИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ – МСХА имени К.А. ТИМИРЯЗЕВА _ ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ И ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ ВОСПРОИЗВОДСТВА ПЛОДОРОДИЯ ПОЧВ И УРОЖАЙНОСТЬ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ КУЛЬТУР Материалы Международной научно-практической конференции Москва Издательство РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева 2012 УДК 631.452 + 631.559 ББК 40.326 + 41.47 Т33 Теоретические и технологические основы ...»

«Российская академия наук Министерство образования и науки РФ Отделение биологических наук РАН Общество физиологов растений России Научный совет по физиологии растений и фотосинтезу РАН Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского (ННГУ) Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН VII Съезд Общества физиологов растений России Физиология растений – фундаментальная основа экологии и инновационных биотехнологий и Международная научная школа Инновации в биологии для ...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное научное учреждение РОССИЙСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ПРОБЛЕМ МЕЛИОРАЦИИ (ФГБНУ РосНИИПМ) ПУТИ ПОВЫШЕНИЯ ЭФФЕКТИВНОСТИ ОРОШАЕМОГО ЗЕМЛЕДЕЛИЯ Сборник научных трудов Выпуск 50 Новочеркасск Геликон 2013 УДК 631.587 ББК 41.9 П 901 РЕДАКЦИОННАЯ КОЛЛЕГИЯ: В. Н. Щедрин (ответственный редактор), Г. Т. Балакай, Т. П. Андреева (секретарь). РЕЦЕНЗЕНТЫ: В. И. Ольгаренко – профессор кафедры Мелиорация зе ...»

«БЮДЖЕТНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ КУЛЬТУРЫ УДМУРТСКОЙ РЕСПУБЛИКИ ЗООПАРК УДМУРТИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ УДМУРТСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ ИЖЕВСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ Пять лет зоопарку Удмуртии: реальность и перспективы Материалы Всероссийской научно-практической конференции Ижевск, 21-24 апреля ...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Самарская государственная сельскохозяйственная академия ТЕХНОЛОГИЯ ХРАНЕНИЯ И ПЕРЕРАБОТКИ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ ПРОДУКЦИИ: КАЧЕСТВО И БЕЗОПАСНОСТЬ СЫРЬЯ И ПРОДОВОЛЬСТВЕННЫХ ТОВАРОВ Сборник трудов Международной научно-практической конференции, посвященной 20-летию технологического факультета Самара 2014 УДК 664 ББК 36.8 С-23 С-23 Технология ...»

«УДК 639.1:574 Состояние среды обитания и фауна охотничьих животных Евразии. Материалы IV Всероссийской научно-практической конференции Состояние среды обитания и фауна охотничьих животных России и I Международной научно-практической конференции Состояние среды обитания и фауна охотничьих животных Евразии, Москва 18-19 февраля 2010 г. / ФГОУ ВПО Российский государственный аграрный заочный университет, ФГОУ ВПО Иркутская сельскохозяйственная академия, Ассо- циация Росохотрыболовсоюз, Министерство ...»

«Федеральное агентство лесного хозяйства (Рослесхоз) Федеральное государственное учреждение Дальневосточный научно-исследовательский институт лесного хозяйства (ФГУ ДальНИИЛХ) ЛЕСА И ЛЕСНОЕ ХОЗЯЙСТВО В СОВРЕМЕННЫХ УСЛОВИЯХ Материалы Всероссийской конференции с международным участием Хабаровск, 4-6 октября 2011 г. FORESTS AND FORESTRY IN MODERN CONDITIONS Materials of International Conference Oct. 4-6, 2011 Far East Forest Research Institute Khabarovsk, Russia Хабаровск 2011 1 УДК 630х(571.6) ...»

«ГОДУ РОДНОЙ ЗЕМЛИ ПОСВЯЩАЕТСЯ 2   Национальная академия наук Беларуси Научно-практический центр НАН Беларуси по биоресурсам Институт экспериментальной ботаники им. В.Ф. Купревича НАН Беларуси Earthwatch Institute (Europe) Материалы Международного научно-практического семинара Растительность болот: современные проблемы классификации, картографирования, использования и охраны Минск, Беларусь 30 сентября – 1 октября 2009 г. Минск Право и экономика 2009 3   УДК 581.526.33/.35:504.062.2 Р24 ...»

«Министерство образования и науки Российской Федерации ФГБОУ ВПО Санкт-Петербургский государственный университет сервиса и экономики СЫКТЫВКАРСКИЙ ФИЛИАЛ СОЦИАЛЬНО-ЭКОНОМИЧЕСКОЕ РАЗВИТИЕ СФЕРЫ СЕРВИСА В РЕГИОНЕ Материалы IV Всероссийской научно-практической конференции молодых учных и студентов 25 апреля 2013 г. Сыктывкар, 2013 Печатается по решению Учного совета УДК 332.1 (063) Сыктывкарского филиала ФГБОУ ВПО СПбГУСЭ ББК 65.4 (протокол № 8 от 27.06.2013) П 78 Редакционная коллегия: Киросова ...»






 
© 2013 www.seluk.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.