WWW.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

 

Pages:   || 2 |

«ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ С ОСНОВАМИ БИОХИМИИ Учебно-методический комплекс по дисциплине для студентов направления 250100.62 Лесное дело всех форм обучения Самостоятельное ...»

-- [ Страница 1 ] --

Министерство образования и науки Российской Федерации

Сыктывкарский лесной институт (филиал) федерального государственного бюджетного

образовательного учреждения высшего профессионального образования

«Санкт-Петербургский государственный лесотехнический университет имени С. М. Кирова»

Кафедра лесного хозяйства

ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ

С ОСНОВАМИ БИОХИМИИ

Учебно-методический комплекс по дисциплине

для студентов направления 250100.62 «Лесное дело»

всех форм обучения

Самостоятельное учебное электронное издание

СЫКТЫВКАР 2012

УДК 581.1

ББК 28.55

Ф48

Рекомендован к изданию в электронном виде кафедрой лесного хозяйства

Сыктывкарского лесного института (протокол № 6 от 21.06.2012) Утвержден к изданию в электронном виде советом сельскохозяйственного факультета Сыктывкарского лесного института (протокол № 9 от 21.06.2012) Составители:

доктор биологических наук, профессор Т. К. Головко, доктор биологических наук, доцент Г. Н. Табаленкова Отв. редактор:

доктор сельскохозяйственных наук, профессор В. В. Пахучий Физиология растений с основами биохимии [Электронный реФ48 сурс] : учеб.-метод. комплекс по дисциплине для студ. направления 250100.62 «Лесное дело» всех форм обучения : самост. учеб. электрон.

изд. / Сыкт. лесн. ин-т ; сост.: Т. К. Головко, Г. Н. Табаленкова. – Электрон. дан. – Сыктывкар: СЛИ, 2012. – Режим доступа:

http://lib.sfi.komi.com. – Загл. с экрана.

В издании помещены материалы для освоения дисциплины «Физиология растений». Приведены рабочая программа курса, сборник описаний лабораторных работ, методические указания по самостоятельной работе студентов.

УДК 581. ББК 28. _ Самостоятельное учебное электронное издание Составители: Головко Тамара Константиновна, Табаленкова Галина Николаевна

ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ С ОСНОВАМИ БИОХИМИИ

Электронный формат – pdf. Объем 2,6 уч.-изд. л.

Сыктывкарский лесной институт (филиал) федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Санкт-Петербургский государственный лесотехнический университет имени С. М. Кирова» (СЛИ), 167982, г. Сыктывкар, ул. Ленина, 39, institut@sfi.komi.com, www.sli.komi.com Редакционно-издательский отдел СЛИ.

© СЛИ, © Головко Т. К., Табаленкова Г. Н., составление,

ОГЛАВЛЕНИЕ

РАБОЧАЯ ПРОГРАММА ПО ДИСЦИПЛИНЕ…………………………………………… СБОРНИК ОПИСАНИЙ ЛАБОРАТОРНЫХ РАБОТ…………………………………

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЕ

СТУДЕНТОВ………………………………………………………………………………

МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Сыктывкарский лесной институт (филиал) федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Санкт-Петербургский государственный лесотехнический университет имени С. М. Кирова» (СЛИ)

РАБОЧАЯ ПРОГРАММА

по дисциплине: «Физиология растений с основами биохимии»

Для подготовки дипломированного специалиста по направлению 250100 «Лесное дело»

Кафедра «Лесное хозяйство»

Основой жизни на планете Земля являются зеленые растения, которые способны использовать солнечную энергию для создания органического вещества. С жизнедеятельностью растений связано появление и накопление кислорода в атмосфере. Природа в течение многовековой эволюции создала на Земле отрегулированный круговорот веществ и энергии, в котором растения играют ведущую роль.

Физиология растений - наука о жизнедеятельности и функциях растительных организмов. Она изучает процессы функциональной активности живых клеток, клеточных компонентов, тканей, органов и растений в целом. Физиология растений является наиболее развитой отраслью экспериментальной ботаники и тесно связана с биохимией, биофизикой, микробиологией, цитологией, генетикой, молекулярной биологией, использует современные методы химии, физики, математики.

Курс физиологии древесных растений дает многостороннее представление о процессах, протекающих в живом многолетнем растении, и теоретически обосновывает способы управления жизнедеятельностью растений с целью наиболее целесообразного их использования в лесном хозяйстве. Кроме того, он знакомит с методами исследования физиологических процессов и с показателями, характеризующими жизненные функции растений.

Программой курса предусмотрено чтение лекций, проведение лабораторных работ.

Курс завершает экзамен.

Физиология растений является одной из фундаментальных основ общебиологической подготовки специалистов в области лесного хозяйства. В результате изучения предмета у студентов должно сформироваться представление о сущности и закономерностях жизненных процессов растительного организма, их зависимость и взаимосвязь с внутренними и внешними факторами. Выяснение внутренней организации физиологических процессов, их значения в жизни растений является важной составной частью теоретической подготовки специалистов по лесному и лесопарковому хозяйству.

На лабораторном практикуме по физиологии растений студентам будут предложены работы, охватывающие основные разделы и содействующие более глубокому усвоению курса, развитию навыков экспериментальной деятельности.

1.3. Перечень дисциплин и тем, усвоение которых необходимо для изучения данной дисциплины Ботаника, органическая и неорганическая химия, дендрология, лесная экология.

1.4. Нормы Государственного образовательного стандарта высшего Процессы жизнедеятельности растений; физиологические процессы обмена в клетках и тканях растений; основные физиологические процессы растений; водный обмен, транспирация, дыхание и фотосинтез. Минеральное питание растений. Рост, развитие, фитогормоны;

понятие об устойчивости, жизнеспособности, морозо– и солеустойчивости растительного организма в различных условиях среды. Биохимическое превращение веществ; покой и прорастание; основы микробиологии. Методы диагностики и повышения устойчивости растений к воздействию неблагоприятных факторов среды.

Тема 1. Введение в физиологию растений. Структурная, функциональная и биохимическая организация растительной клетки.

1.1. Предмет и задачи физиологии растений.

1.2. Строение растительной клетки.

1.3. Клеточная стенка. Субклеточные структуры.

1.4. Биогенез клеточных структур.

1.5. Фазы онтогенеза растительной клетки: деление, растяжение, дифференцировка, старение и смерть.

1.6. Физиологические процессы обмена веществ в клетках и тканях растений.

Тема 2. Мембраны и мембранный транспорт.

2.1. Структура и функции мембран.

2.2. Движение воды и других молекул через мембраны.

2.3. Проницаемость мембран. Движение ионов через мембраны.

2.4. Мембраны и энергетика клеток.

2.5.Роль мембран при взаимодействии клеток растений с патогенами.

2.6. Мембранная регуляция.

Тема 3. Основные физиологические процессы растений. Фотосинтез.

3.1. Общее уравнение фотосинтеза.

3.2. Пигменты пластид.

3.3. Световая фаза фотосинтеза.

3.4. Фотофосфорилирование.

3.5. Путь углерода в фотосинтезе (темновая фаза фотосинтеза).

3.6. Физиология и экология фотосинтеза древесных растений.

4.1. Общее уравнение дыхания.

4.2. Основные пути окисления дыхательного субстрата: гликолиз, цикл ди– и трикарбоновых кислот.

4.3. Дыхательная электротранспортная цепь и окислительное фотофосфорилирование.

4.4. Физиологические и экологические аспекты дыхания древесных растений.

5.1. Значение воды в жизнедеятельности растений.

5.2. Структура и свойства воды.

5.3. Водный обмен растительных клеток.

5.4. Поглощение и передвижение воды по растению.

5.5. Транспирация.

5.6. Особенности водного обмена у древесных растений.

Тема 6. Минеральное питание растений.

6.1. Физиологическая роль и содержание минеральных элементов в растениях: макро– и микроэлементы.

6.2. Поглощение и транспорт элементов минерального питания.

6.3. Метаболизм корней в связи с первичной ассимиляцией минеральных веществ.

6.4. Питание азотом.

6.5. Симбиотическое связывание атмосферного азота.

6.6. Роль микоризы у древесных растений.

6.7. Круговорот элементов. Основы микробиологии. Участие микроорганизмов в биологическом круговороте.

Тема 7. Рост и развитие растений.

7.1. Общие представления о росте и развитии растений.

7.2. Регуляторы роста. Фитогормоны.

7.3. Влияние факторов внешней среды на рост растений.

7.4. Периодичность роста и состояние покоя.

7.5. Биохимическое превращение веществ. Покой и прорастание. Период покоя семян и приемы ускорения их прорастания.

7.6. Период покоя почек и способы его регулирования.

7.7. Взаимодействие частей растений. Корреляции и полярность.

7.8. Индивидуальное развитие растений.

7.9. Условия перехода от вегетативного роста к репродуктивному развитию. Фотопериодизм и яровизация.

7.10. Физиологические основы опыления и оплодотворения.

7.11. Ростовые движения растений.

Тема 8. Механизмы защиты и устойчивости растений.

8.1. Общие представления об устойчивости и жизнеспособности растений в различных условиях среды. Холодоустойчивость, морозоустойчивость, зимостойкость.

8.2. Влияние на растения избытка и недостатка воды в почве 8.3. Жаростойкость, солеустойчивость.

8.4. Устойчивость растений к антропогенным фактором и к патогенным микроорганизмам.

Методы диагностики и повышения устойчивости растений к воздействию неблагоприятных факторов среды.

2.2. Лабораторные занятия, их наименование, краткое содержание.

1. Физиология растительной клетки. Определение осмотического давления клеточного сока плазмолитическим методом. Определение проницаемость живой и мертвой цитоплазмы для веществ клеточного сока. Накопление метиленовой синей в клетках элодеи.





Определение влияния ионов калия и кальция на вязкость цитоплазмы по времени плазмолиза. Определение жизнеспособности семян по окрашиванию цитоплазмы.

2. Фотосинтез. Определение содержания и свойств пигментов фотосинтетической системы высших растений. Определение скорости фотосинтеза листьев и скорости растительных тканей на газоанализаторе.

3. Дыхание растений. Определение интенсивности по количеству выделенного диоксида углерода. Определение активности дегидраз, пероксидаз и полифенооксидаз в растениях.

4. Водный режим и водный баланс растений.

Определение интенсивности транспирации и потери водного запаса листьев с помощью торсионных весов. Изучение водообмена зимующего побега и определение водопроводимости древесины.

5. Минеральное питание растений.

Определение содержания зольных элементов в различных частях древесного растения. Микрохимический анализ золы. Влияние уровня минерального питания на рост растений.

6. Рост и развитие растений.

Влияние гормонов на прорастание семян и рост корней. Основные закономерности формирования прироста побегов в длину.

2.3. Самостоятельная работа и контроль успеваемости.

3) Проработка теоретического материала, не рас- ФО сматриваемого на лекционных занятиях Текущая успеваемость студентов контролируется опросом по лабораторным работам (ОЛР), фронтальным опросом текущего материала (ФО), выполнение контрольной работы (КР). Итоговая успеваемость определяется на экзамене.

Объем работ студента определяется: лек. – лекции, лаб. р. – лабораторные работы, сам. р. – самостоятельные работы.

Структурная, функциональная и биохимическая организация растительной клетки 3. Основные физиологические процессы растений. Фотосинтез ФО, ОЛР 1. Предмет и задачи физиологии растений. Проблемы физиологии древесных растений.

2. Клетка - элементарная единица жизни. Клеточные структуры и их функции.

3. Основные функции структурных компонентов растительной клетки.

4. Химический состав клетки. Химическое строение и роль белков, углеводов, нуклеиновых кислот и липидов в жизнедеятельности клетки.

5. Клеточные мембраны, их структура и функции.

6. Растительная клетка как осмотическая система. Осмотическое давление, тургор, сосущая сила.

7. Мембранный транспорт: пассивный, активный.

8. Сущность и значение фотосинтеза как планетарного космического процесса.

9. Основные этапы фотосинтеза. Докажите наличие в процессе фотосинтеза световой и темновой стадий.

10. Световая фаза фотосинтеза, происхождение кислорода при фотосинтезе.

11. Фотохимические реакции фотосинтеза, их функции и значение.

12. Циклическое и нециклическое фотофосфорилирование. Их основные отличия.

13. Лист как орган фотосинтеза. Структурная организация хлоропласта.

14. Роль пигментов в процессе фотосинтеза.

15. Структура и функции хлорофиллов. Биосинтез хлорофилла, условия, необходимые для его образования.

16. Структура и функции каротиноидов.

17. Пути углерода в фотосинтезе. С3-путь.

18. Пути углерода в фотосинтезе. С4–путь. Основные отличия С3 и С4 пути.

19. Влияние внешних условий на фотосинтез.

20. Регуляция процессов фотосинтеза в целом растении.

21. Значение отдельных участков солнечного спектра для фотосинтеза. Фотосинтетически активная радиация.

22. Дыхание растений. Значение дыхания в жизни растений.

23. Строение и функции митохондрий.

24. Основные пути окисления дыхательного субстрата.

25. Аэробное дыхание, основные стадии.

26. Гликолиз. Биологическое значение и энергетический выход.

27. Цикл Кребса, биологическое значение. Продукты и энергетический выход.

28. Компоненты дыхательной цепи переноса электронов. Окислительное фосфорилирование.

29. Брожение, типы брожения. Связь гликолиза и брожения.

30. Механизмы регуляции процессов дыхания. Влияние внешних и внутренних факторов на интенсивность дыхания 31. Биологическая роль воды в жизни растений.

32. Транспирация, ее значение в жизни растений.

33. Устьичная и кутикулярная транспирация.

34. Водный обмен у растений различных экологических групп.

35. Влияние внешних и внутренних факторов на водообмен древесных растений.

36. Роль элементов минерального питания для жизнедеятельности растений. Микро- и макроэлементы.

37. Корневая система как орган поглощения воды и минеральных элементов 38. Микориза и ее значение в минеральном питании древесных растений.

39. Механизм поглощения ионов растительной клеткой.

40. Физиологическая роль азота. Фиксация молекулярного азота.

41. Восстановление нитратов в растениях.

42. Пути ассимиляции аммиака.

43. Физиологическая роль калия, кальция, магния в жизни растений.

44. Физиологическая роль фосфора в жизни растений.

45. Микроэлементы, их роль в жизни растений.

46. Влияние внешних факторов на поглотительную активность корней и минеральный состав растений.

47. Корневая система как орган поглощения воды и минеральных элементов.

48. Общие представления о фитогормонах. Их роль в жизнедеятельности растительных 49. Ауксины, их образование, физиология и биохимия действия.

50. Гиббереллины, их образование, физиология и биохимия действия.

51. Цитокинины, их образование, физиология и биохимия действия.

52. Абсцизины, их образование, физиология и биохимия действия.

53. Физиологические проявления этилена.

54. Определение понятий рост и развитие растений. Этапы онтогенеза древесных растений.

55. Периодичность роста и состояние покоя у древесных растений.

56. Типы покоя семян и почек.

57. Влияние внешних факторов на рост и развитие растений.

58. Способы размножения растений. Вегетативное и половое размножение.

59. Периодичность плодоношения у древесных растений.

60. Фотопериодизм, яровизация.

61. Способы движения растений, их значение. Ростовые тропизмы и настии.

62. Физиологические основы устойчивости растений. Типы устойчивости.

63. Механизмы стресса на клеточном и организменном уровнях.

64. Понятия морозоустойчивость и зимостойкость, механизмы защиты.

65. Устойчивость растений к низким температурам. Холодоустойчивость, механизмы защиты.

66. Засухоустойчивость, влияние недостатка воды и перегрева на растения, механизмы 67. Устойчивость растений к недостатку кислорода.

68. Устойчивость растений к антропогенным факторам. Газоустойчивость. Радиоустойчивость.

69. Устойчивость растений к патогенным микроорганизмам.

70. Компоненты водного баланса в системе почва — растение — атмосфера.

3.2. Вопросы для выполнения контрольной работы студентами заочной Методические указания по выполнению контрольных работ для студентов заочного обучения оформлены отдельным изданием.

1. Физиология растений [Текст] : учеб. для студ.вузов, обучающихся по биологическим спец.

и направлению 510600 "Биология" / под ред. И. П. Ермакова. – Москва : Академия, 2007. – 640 с. – (Высшее профессиональное образование).

Дополнительная учебная, учебно-методическая литература 1. Кузнецов, В. В. Физиология растений [Текст] : учеб. для студ. вузов, обучающихся по направлениям подготовки бакалавров и магистров "Агрохимия и агропочвоведение", "Агрономия" и направления подготовки дипломированных специалистов "Агрохимия и агропочвоведение", "Агрохимия" / В. В. Кузнецов, Г. А. Дмитриева. – Москва : Высш. шк., 2005. – 736 с.

2. Физиология растений с основами биохимии [Электронный ресурс] : сб. описаний лаб. работ для студ. направления бакалавриата 250100 "Лесное дело" и спец. 250201 "Лесное хозяйство" всех форм обучения : самост. учеб. электрон. изд. / М-во образования и науки Рос. Федерации, Сыкт. лесн.

ин-т (фил.) ФГБОУ ВПО С.-Петерб. гос. лесотехн. ун-т им. С. М. Кирова, Каф. лесного хозяйства ;

сост.: Г. Н. Табаленкова, Т. К. Головко, В. В. Далькэ. – Электрон. текстовые дан. (1 файл в формате pdf: 0,4 Мб). – Сыктывкар : СЛИ, 2012. – on-line. – Систем. требования: Acrobat Reader (любая версия). – Загл. с титул. экрана. – Режим доступа: http://lib.sfi.komi.com/ft/301-000218.pdf.

3. Физиология растений [Текст] : сб. описаний лаб. работ для подготовки дипломированного специалиста по направлению 656200 "Лесное хозяйство и ландшафтное строительство" спец. "Лесное хозяйство" / Федеральное агентство по образованию, Сыкт. лесн. ин-т – фил. ГОУ ВПО "С.Петерб. гос. лесотехн. акад. им. С. М. Кирова", Каф. лесного хозяйства ; сост.: Т. К. Головко, Г. Н.

Табаленкова. – Сыктывкар : СЛИ, 2007. – 36 с.

4. Физиология растений. Самостоятельная работа студентов [Текст] : метод. указ. для подготовки дипломированных специалистов по направлению 656200 "Лесное хозяйство и ландшафтное строительство" спец. 250201 "Лесное хозяйство" / Федеральное агентство по образованию, Сыкт.

лесн. ин-т – фил. ГОУ ВПО "С.-Петерб. гос. лесотехн. акад. им. С. М. Кирова", Каф. лесного хозяйства ; сост. : Т. К. Головко, Г. Н. Табаленкова. – Сыктывкар : СЛИ, 2007. – 24 с.

1. Биология [Текст] : большой энциклопедический словарь / под ред. М. С. Гилярова. – 3-е (репринтное) изд. – Москва : Большая Рос. энциклопедия, 1999. – 864 с.

2. Лесная энциклопедия [Текст] : в 2-х томах. Т. 1. Абелия-Лимон / ред. Н. П. Анучин. – Москва : Сов. энциклопедия, 1985. – 563 с.

3. Лесная энциклопедия [Текст] : в 2-х томах. Т. 2. Лимоннок-Ящерицы / ред. Н. П. Анучин. – Москва : Сов. энциклопедия, 1986. – 631 с.

4. Лесоведение [Текст]/ РАН. – Москва : Наука. – Выходит раз в два месяца.

2007 № 1-6;

2008 № 1-3,5,6;

2009 № 1-3;

2010 № 1-6;

2011 № 1-6;

2012 № 1-5;

5. Табаленкова, Г. Н. Продукционный процесс культурных растений в условиях холодного климата [Текст] / Г. Н. Табаленкова, Т. К. Головко ; Коми НЦ УрО РАН, Ин-т биологии. – СанктПетербург : Наука, 2010. – 231 с.

6. Энциклопедия лесного хозяйства [Текст] : в 2-х томах. Т. 1. А-Л / М-во природ. ресурсов Рос. Федерации, Федеральное агентство лесн. хоз-ва. – Москва : ВНИИЛМ, 2004. – 416 с.

1. Лесной кодекс Российской Федерации [Электронный ресурс] : от 04.12.2006 № 200-ФЗ :

ред. от 28.07.2012 // СПС "КонсультантПлюс".

МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

федерального государственного бюджетного образовательного учреждения «Санкт-Петербургский государственный лесотехнический университет

СОГЛАСОВАНО УТВЕРЖДАЮ

Декан факультета лесного и сель- Зам. директора по учебной работе ского хозяйства "" _ 20_ г. "" 20_ г.

СБОРНИК ОПИСАНИЙ ЛАБОРАТОРНЫХ РАБОТ

по дисциплине: «Физиология растений с основами биохимии»

Для подготовки дипломированного специалиста по направлению 250100 «Лесное дело»

КАФЕДРА ЛЕСНОГО ХОЗЯЙСТВА

КУРС СЕМЕСТР

ОГЛАВЛЕНИЕ

3. Лабораторная работа №3. Водный режим и водный баланс растений

ВВЕДЕНИЕ

Основой жизни на планете Земля являются зеленые растения, которые способны в процессе фотосинтеза запасать энергию солнечной радиации в органических веществах.

Природа в течение многовековой эволюции создала на Земле отрегулированный круговорот веществ и энергии, в котором растения играют ведущую роль. Лесам принадлежит приоритет в накоплении биомассы и продуцировании кислорода.

Физиология растений как наука о жизнедеятельности и внутренней организации физиологических процессов является наиболее развитой отраслью экспериментальной ботаники. Она тесно связана с химией, физикой, биохимией, микробиологией, молекулярной биологией.

В результате изучения физиологии растений у студентов должно сформироваться представление о фундаментальных процессах жизнедеятельности растений: фотосинтез, дыхание, водный обмен, минеральное питание, рост и развитие, устойчивость к биотическим и абиотическим факторам. Выяснение внутренней организации физиологических процессов, их значения в жизни растений является важной составной частью теоретической подготовки специалистов по лесному и лесопарковому хозяйству. Рост, развитие, фитогормоны, понятие об устойчивости, жизнеспособности, морозо- и солеустойчивости растительного организма, в различных условиях среды, биохимическое превращение веществ, покой и прорастание, основы микробиологии, методы диагностики и повышения устойчивости растений к воздействию неблагоприятных факторов среды.

На лабораторном практикуме по физиологии растений студентам будут предложены работы, охватывающие основные разделы и содействующие более глубокому усвоению курса, развитию навыков экспериментальной деятельности.

Курс лабораторных работ, представленных в сборнике описаний лабораторных работ является средством закрепления знаний, полученных на теоретических занятиях. Знания и умения, приобретаемые при выполнении работ должны соответствовать квалификационной характеристике выпускника специальность «Лесное хозяйство». Структура сборника, условия и особенности выполнения лабораторных работ отражены в его содержании и описаниях конкретных лабораторных работ. Форма отчетности студента определяется формой обучения и предполагает обязательную защиту каждой лабораторной работы по ее завершении и защиту всех лабораторных работ в конце семестра (учебного года).

Тема: Физиология растительной клетки.

Цель работы: Изучение химического состава растительной клетки, ознакомление с осмотическими явлениями в растительной клетке.

1. Качественные реакции на белок.

2. Качественные реакции на углеводы.

3. Определение дубильных веществ.

4. Реакции на одревесневшую клеточную оболочку 5. Плазмолиз, деплазмолиз.

6. Характеристика проницаемости живой и мертвой цитоплазмы.

7. Сравнить вязкость цитоплазмы в зависимости от возраста листа и действия химических реагентов.

Задание: Определить химический состав растительной клетки. Определить осмотические свойства растительной клетки.

Требование к отчету:

Результаты лабораторных работ должны быть оформлены в специальных тетрадях по следующему плану: 1. Название темы. 2. Название работы. 3 Оборудование, реактивы. 4.

Ход работы. 5. Выводы на основании полученных результатов. Результаты оформить в виде рисунка.

Обеспечивающие средства: 1) едкий натрий, 10% раствор; 2) сернокислая медь 1% раствор; 3) азотная кислота концентрированная; 4) серная кислота концентрированная; 5) уксусная кислота ледяная; 6) аммиак, 25%; 7) раствор белка; 9) пипетки с делением до 1 мл;

10) воронки обыкновенные (маленькие); 11) штатив для пробирок; 12) пробирки.

Биуретовая реакция. Биуретовая реакция обуславливается присутствием в молекуле пептидной группы - СО - NH -, входящей в состав биурета, откуда и произошло название самой реакции. Ее дают не только белки, но и полипептиды.

Ход работы. К исследуемому раствору (2-3 мл) приливают 1-2 мл 10-процентного раствора щелочи и несколько капель 1-процентного раствора медного купороса. В присутствии белковых веществ жидкость окрашивается в фиолетовый цвет. не следует приливать избытка медного купороса, так как в этом случае фиолетовая окраска будет замаскирована синей.

2. Ксантопротеиновая реакция. Большинство белков при нагревании их с крепкой азотной кислотой дает желтое окрашивание. Желтый - по-гречески “ксантос”, откуда и произошло название ксантопротеиновой реакции. Эту реакцию дают все белки, содержащие циклические аминокислоты (венилаланин, тирозин, триптофан). химизм реакции сводится к нитрованию бензольного кольца с образованием нитросоединений желтого цвета. Этим же объясняется появление желтого окрашивания при попадании концентрированной азотной кислоты на кожу, шерсть и т.д.

Ход работы. К исследуемому раствору в пробирке приливают 1-2 мл концентрированной азотной кислоты. Проявление желтого осадка при нагревании указывает на присутствие белка. После прибавления к раствору избытка аммиака желтый цвет осадка переходит в оранжевый.

3. Реакция Адамкевича. При действии на белок глиоксиловой кислоты в присутствии концентрированной серной кислоты получается красно-фиолетовое окрашивание раствора, связанное с присутствием в белке триптофана.

Ход работы. Наливают в пробирку несколько капель исследуемого раствора и прибавляют 1 мл концентрированной уксусной кислоты, которая всегда содержит в качестве примеси глиоксиловую кислоту. Сильно наклоняют пробирку и осторожно по стенке вливают в нее 1 мл концентрированной серной кислоты так, чтобы жидкости не смешались; при этом на границе двух жидкостей получается красно-фиолетовое кольцо, появление которого свидетельствует о присутствии в белке триптофана.

Обеспечивающие средства: 1) натрий едкий, 10% раствор; 2) медь сернокислая, 1% раствор; 3) сахар, 1% раствор; 4) реактив Фелинга; 5) аммиак, 10% раствор; 6) серебро азотнокислое, 2%; 7) соляная кислота; 8) резорцин в растворе или в кристаллах; 9) йод, 1% раствор в йодистом калии; 10) крахмал, 1% раствор; 11) штатив деревянный с набором пробирок.

1. Реакция Троммера. окислителем является гидрат окиси меди, восстанавливающийся в присутствии редуцирующих сахаров до гидрата закиси или закиси меди.

Ход работы. К 2 мл исследуемого раствора приливают 1 мл 10% раствора едкого натрия и по каплям 1% раствор медного купороса до появления мути голубого цвета. Затем смесь в пробирке нагревают до кипения. Появление желтого (гидрат закиси меди) или красного (закись меди) осадка указывает на присутствие в растворе сахара. При этом происходят следующие реакции:

2. Реакция Фелинга. Окислителем также является гидрат окиси меди. Эта реакция отличается от предыдущей тем, что к реагирующей смеси добавляется сегнетовая соль для связывания избытка гидрата окиси меди. Сегнетовая соль является двойной солью винной кислоты:

Ход работы. К 2 мл исследуемого раствора приливают 0,5 мл реактива Фелинга и нагревают до кипения. При этом появляется красный осадок закиси меди. При наличии в растворе небольшого количества сахара выпадает желтый осадок гидрата закиси меди.

3. Реакция Селиванова. Применяется для обнаружения кетоз. Она особенно хорошо получается с фруктозой и полисахаридами, дающими при гидролизе фруктозу (например, сахароза). Реакция Селиванова основана на образовании оксиметилфурфурола, дающего с резорцином красное окрашивание.

Ход работы. К 1 мл исследуемого раствора приливают 1 мл концентрированной соляной кислоты и прибавляют несколько кристалликов резорцина. пробирку с жидкостью нагревают в течение 1-2 минут на кипящей водяной бане. В случае присутствия в растворе сахаров, содержащих кетогруппу, жидкость окрашивается в красный цвет.

4. Цветная реакция на крахмал. К 2 мл исследуемого раствора приливают одну каплю раствора йода в йодистом калии. При этом жидкость окрашивается в синий цвет.

Обеспечивающие средства: 1% раствор хлорного железа, пробирки, спиртовка, древесная кора зеленые растения.

Ход работы: а). Из сочных частей растений выжимают 1-2 капли сока на предметное стекло и наносят 1 каплю 1% раствора хлорного железа. Появление зеленого и черного окрашивания свидетельствует о наличии дубильных веществ.

б). В пробирку помещают кусочки древесной коры, добавляют воды (все содержимое занимает 1/2 объема пробирки) и кипятят. После непродолжительного кипячения сливают экстракт в сухую пробирку и добавляют 1-3 капли 1% раствора хлорного железа. Содержимое пробирки окрашивается в зелено-черный цвет, что свидетельствует о наличии дубильных веществ.

Работа 4. Реакция на одревесневшую клеточную оболочку Обеспечивающие средства: 2% марганцевокислый калий, 25% аммиак, 50% соляная кислота, фильтровальная бумага, пробирки, спиртовка, куски древесины лиственных пород Ход работы: Срезы растительной ткани помещают в сосуд с 2% раствором марганцевокислого калия на 2-3 мин. По истечении времени извлекают срезы и промывают 50 % соляной кислотой 1-2 мин, затем обсушивают и помещают в каплю 25 % аммиака на предметном стекле. Накрывают покровным стеклом и рассматривают под микроскопом. Одревесневшая оболочка клетки окрашивается в красный цвет.

Эту же работу можно провести с кусками древесины лиственных пород. На поверхность среза наносят 5-6 капель 10 % раствора марганцевокислого калия. Через минуту удаляют их фильтрованной бумагой и высушенные места смачивают 2-3 каплями концентрированной соляной кислотой. По истечении 2-х минут удаляют фильтрованной бумагой кислоту и наносят 2-3 капли 25 % раствора аммиака. Появляется красная окраска.

Красное окрашивание обычно дает древесина лиственных пород, а у хвойных - эта реакция отсутствует ( у хвойных возможна лишь бледно-коричневая окраска).

Если сопоставить двудольные растения и однодольные, то красное окрашивание одревесневших клеточных оболочек характерно для двудольных; однодольные дают бурую окраску.

Работа 5. Проницаемость живой и мертвой цитоплазмы для веществ клеточного Обеспечивающие средства: 1) корнеплод красной свеклы; 2) 30 % уксусная кислота;

3) хлороформ в капельнице (с притертой пипеткой); 4) тарелка; 5) фарфоровая чашка; 6) скальпель; 7) пинцет; 8) штатив с пробиркой (4 шт); 9) стакан химический; 10) держалка для пробирок; 11) спиртовка; 12) спички.

Ход работы. Вырезать из очищенного корнеплода красной свеклы четыре одинаковых брусочка длиной около 2 см и шириной 1 см (корнеплод должен быть свежим, т.е. иметь хороший тургор, так как с подвядшим опыт не дает четких результатов). Положить брусочки в фарфоровую чашку и многократно промыть водопроводной водой до тех пор, пока не прекратиться выделение окрашенного сока из перерезанных клеток, поместить брусочки в пробирки и налить в две пробирки воду (до 1/2 объема), в третью - воду и 5 капель хлороформа, в четвертую - 30 % уксусную кислоту. Одну из пробирок с водой прокипятить в течение 1-2 мин, слить жидкость и залить брусочек холодной водой.

Наблюдать в течение 1-2 ч за изменением окраски жидкости в пробирках, время от времени взбалтывая их содержимое. Результаты записать в форме таблицы.

Вода комнатной температуры Кипячение Вода + хлороформ 30% уксусная кислота Обеспечивающие средства: 1) луковица синего лука или листья традесканции; 2) 1M раствор сахарозы в капельнице; 3) лезвие бритвы; 4) скальпель; 5) пинцет; 6) препаровальная игла; 7) микроскоп; 8) предметные и покровные стекла; 9) стакан с кипяченой водопроводной водой; 10) стеклянная палочка; 11) кусочки фильтрованной бумаги; 12) спиртовка; 13) спички.

Ход работы. Срезать бритвой кусочек эпидермиса, клетки которого содержат антоциан. Во избежание повреждения клеток эпидермиса желательно, чтобы срез состоял из двух слоев клеток.

Поместить срез в каплю воды на предметное стекло, накрыть покровным стеклом и рассмотреть в микроскоп клетки с окрашенным клеточным соком. Заменить воду 1М раствором сахарозы, для чего на предметное стекло рядом с покровным нанести большую каплю раствора и отсосать воду кусочком фильтрованной бумаги, прикладывая ее с другой стороны покровного стекла. Повторить этот прием 2-3 раза до полной замены воды раствором.

Все время следить в микроскоп за тем, что происходит в клетках.

Сделать схематические рисунки клеток в состоянии тургора, уголкового, вогнутого и выпуклого плазмолиза, обозначив основные составные части клеток.

Ввести под покровное стекло 2-3 капли воды, отсасывая раствор фильтрованной бумагой, и немедленно приступить к наблюдению деплазмолиза клеток (обратите внимание на скорость этого процесса по сравнению с плазмолизом).

После окончания деплазмолиза убить клетки, держа край предметного стекла пинцетом и осторожно нагревая препарат на пламени спиртовки, не допуская испарения воды. Заменить воду на 1М раствора сахарозы и, рассматривая препарат в микроскоп, установить, происходит ли плазмолиз.

Работа 7. Определение вязкости цитоплазмы по времени Обеспечивающие средства: 1) веточки элодеи; 2) луковица синего лука или листья традесканции; 3) 0,8 М раствор сахарозы в капельнице; 4) лезвие бритвы; 5) препаровальная игла; 6) пинцет; 7) микроскоп; 8) предметные и покровные стекла.

Промежуток времени от момента погружения клеток в гипертонический раствор до появления выпуклого плазмолиза называют временем плазмолиза. это время зависит от вязкости цитоплазмы: чем меньше вязкость, тем легче цитоплазма отстает от клеточной стенки и тем быстрее вогнутый плазмолиз переходит в выпуклый. Вязкость цитоплазмы зависит от степени дисперсности и гидратации коллоидов, от содержания в клетке воды и ряда других факторов. Цитоплазма растущих клеток и клеток, закончивших рост, имеет разную вязкость.

Для опыта используют молодые листочки элодеи, в которых можно различить четыре зоны: в основании расположена слабо окрашенная зона деления клеток, выше находится зона растяжения, еще выше - зона дифференцировки и, наконец, верхушка листа, которая состоит из клеток, закончивших свой рост и имеющих интенсивно зеленую окраску.

Ход работы: Взять 2-3 молодых листочка из верхушечной части побега элодеи (листья должны иметь зеленый кончик и бледно-зеленое основание), погрузить в каплю 0,8 М раствора сахарозы на предметном стекле и закрыть покровным стеклом. для сравнения в другую каплю раствора сахарозы поместить срез эпидермиса синего лука или традесканции. Отметить время погружения исследуемых объектов в раствор. Рассматривая препараты в микроскоп через каждые 5 мин, определить время плазмолиза, причем у листа элодеи следует наблюдать за клетками различных зон.

Записать результаты и сделать вывод о зависимости вязкости цитоплазмы от возраста клетки.

Работа 8. Влияние ионов калия и кальция на вязкость цитоплазмы Обеспечивающие средства: 1) луковица синего лука или листья традесканции; 2) растворы 1M КNO3 и 0,7 М Са(NO3)2 в капельницах (оба раствора должны быть приготовлены из химически чистых солей на дистиллированной или, еще лучше, бидистиллированной воде); 3) лезвие бритвы; 4) препаровальная игла; 5) микроскоп; 6) предметные и покровные стекла; 7) карандаш по стеклу; 8) вазелин; 9) кусочки фильтрованной бумаги.

Ионы минеральных солей способны влиять на свойства коллоидов цитоплазмы, изменяя ее вязкость, причем ионы одно- и двухвалентных металлов проявляют противоположное действие. О вязкости цитоплазмы можно судить по времени плазмолиза: при большой вязкости цитоплазма с трудом отстает от клеточной стенки, сохраняя длительное время вогнутые поверхности (вогнутый плазмолиз), если же вязкость цитоплазмы мала, то вогнутый плазмолиз быстро переходит выпуклый.

Ход работы. Нанести на предметные стекла по капле растворов КNO3 и Са(NO3)2 (сделать на стеклах соответствующие надписи). Поместить в растворы по кусочку эпидермиса с окрашенным клеточным соком и закрыть покровными стеклами. Во избежание испарения смазать края покровных стекол вазелином (или время от времени вводить под покровные стекла новые капли растворов). Записать время погружения срезов в растворы и сразу приступить к наблюдению под микроскопом, отмечая время наступления фаз плазмолиза (при этом не следует принимать во внимание периферическую зону, так как там свойства цитоплазмы могут быть изменены вследствие раневого раздражения). Результаты записать в таблицу.

Плазмолитик Время погружения уголкового вогнутого выпуклого КNO Са(NO3) Зарисовать наиболее характерные клетки через 5-10 мин после погружения срезов в растворы. Сделать вывод о влиянии ионов калия и кальция на вязкость цитоплазмы.

Работа 9. Определение жизнеспособности семян методом окрашивания Обеспечивающие средства: 1) семена гороха, намоченные в воде 10-15 ч до занятия;

2) 0,1% раствор индигокармина (1г на 1л дистиллированной воды); 3) Чашки фарфоровые ( шт); 4) Стакан химический; 5) стакан фаянсовый с влажными опилками; 6) тарелка; 7) препаровальная игла; 8) электроплитка; 9) карандаш по стеклу.

Метод окрашивания семян для определения их всхожести основан на непроницаемости живой цитоплазмы для некоторых красок (индигокармин, кислый фуксин), тогда как мертвая цитоплазма легко прокрашивается. Бывают случаи, когда зародыш мертвый, и, тем не менее, при погружении семени в раствор краски оно не окрашивается из-за того, что окружающие зародыш части семени не пропускаю окраску. В связи с этим необходимо предварительно обнажить зародыш у семян с эндоспермом извлечь зародыш или разрезать семена вдоль, а у семян без эндосперма удалить семенные покровы.

Подготовленные описанным способом семена выдерживают в растворе краски от 1 до ч (в зависимости от вида растения) и оцениваю жизнеспособность семян: семена с полностью окрашенными зародышами или с окрашенными корешками считают невсхожими, семена не окрашенные или частично окрашенными семядолями относят к числу жизнеспособных.

Данный метод используют для быстрой оценки всхожести семян гороха, фасоли, люпина, льна конопли, тыквенных.

Ход работы. Отсчитать, не выбирая, две порции 10 набухших семян гороха. Одну порцию поместить в стакан с водой и прокипятить в течение 5 мин (контроль). Осторожно, не повреждая семядоля, очистить препаровальной иглой семена обеих порций от кожуры, поместить в фарфоровые чашки, залить раствором индигокармина и выдержать 1 ч, после чего слить краску обратно в бутылочку, а семена отмыть водой из избытка красителя.

Отметить окраску семян, убитых кипячением. В опытной порции подсчитать количество окрашенных, частично окрашенных и неокрашенных семян. Для проверки всхожести высадить все 10 семян в стакан с влажными опилками, поставить в темный шкаф и ежедневно поливать. Через несколько дней подсчитать количество проросших семян.

Результаты записать в таблицу.

Сопоставить результаты, полученные методом окрашивания и методом проращивания.

Работа 10. Накопление метиленовой синей в клетках элодеи Обеспечивающие средства: 1) побеги элодеи длиной около 10 см; 2) раствор метиленовой синей 1: 50 000 (20 мг в 1л водопроводной воды); 3) 1М раствор КNO3 в капельнице;

4) пинцет; 5) штатив с пробирками (2 шт.); 6) микроскоп; 7) предметные и покровные стекла;

8) полоски фильтрованной бумаги.

В предыдущих работах было продемонстрировано важнейшее свойство цитоплазмы полупроницаемость, т.е. способность легко пропускать воду и задерживать растворенные вещества. Однако цитоплазма не обладает идеальной полупроницаемостью: она пропускает не только воду, но и многие вещества, причем некоторые из них со значительной скоростью.

К числу таких веществ относится метиленовая синяя, которая довольно быстро проникает в растительные клетки. Ткани некоторых растений способны накапливать большое количество метиленовой синей вплоть до почти полного извлечения ее наружного раствора вследствие химического связывания краски содержащимся в клетках дубильными веществами, причем нередко образуются небольшие синие кристаллы.

Ход работы. Заполнить две пробирки раствором метиленовой синей. Поместить в одну пробирку 2-3 побега элодеи, вторую оставить в качестве контроля. Через 2-3 ч (или через сутки) отметить изменение интенсивности окраски в сосуде с растениями по сравнению с контролем (рассматривать на светлом фоне). Поместить 1-2 интенсивно окрашенных листочка на предметное стекло в каплю 1 М раствора KNO3, накрыть покровным стеклом и через 15мин рассмотреть в микроскоп при большом увеличении. Зарисовать плазмолизированную клетку.

Работа 11. Прижизненное окрашивание клеток нейтральным красным Обеспечивающие средства: 1) луковица обыкновенного лука, листья разных растений; 2) 0,02% раствор нейтрального красного в капельнице; 3) 1М раствор КNO3 в капельнице; 4) скальпель; 5) лезвие бритвы; 6) препаровальная игла; 7) микроскоп; 8) предметные и покровные стекла; 9) стеклянная палочка; 10) стаканчик с водичкой; 11) кусочки фильтрованной бумаги; 12) цветные карандаши.

Подобно метиленовой синей краска нейтральный красный способна проникать в живые клетки и накапливаться в них в больших количествах. При непродолжительном прибывании клеток в растворе нейтрального красного цитоплазма не отмирает, в чем можно убедиться, вызвав плазмолиз окрашенных клеток (плазмолизироваться могут только живые клетки).

Нейтральный красный - двухцветный индикатор: в кислой среде (рН 6) он имеет малиновую окраску, в щелочной - желтую.

Для понимая результатов данной работы необходимо иметь в виду, что в растворе рН около 7 нейтральный красный находится в форме недиссоциированных молекул, хорошо растворимых в липидах мембран, тогда как в кислой среде (рН 6) это вещество диссоциирует на ионы, плохо растворимые в липидах.

Ход работы. Приготовить 2-3 среза эпидермиса чешуи обыкновенного лука или листьев каких либо других растений и поместить их на предметное стекло в большую каплю раствора нейтрального красного, не накрывая покровным стеклом (при хорошем доступе воздуха окрашивание происходит быстрее). Через 10-15 мин (не более) отсосать раствор краски фильтрованной бумагой, перенести срезы в каплю воды, накрыть покровным стеклом и рассмотреть в микроскоп. Заменить воду 1М раствором KNO3 и продолжать наблюдение при большом увеличении. За рисовать плазмолизированную клетку, отметив, какая часть окрашена красителем (клеточная стенка, цитоплазма или вакуоль) и в какой цвет (раскрасить цветным карандашом).

Работа 12. Влияние ионов калия и кальция на проницаемость цитоплазмы.

Обеспечивающие средства: 1) луковица обыкновенного лука; 2) побеги элодеи; 3) 0,02% раствор нейтрального красного в капельнице; 4) 1М раствор КNO3 в капельнице; 5) 0,7М раствор Са(NO3)2 в капельнице; 6) 1М раствор сахарозы в капельнице; 7) лезвие бритвы; 8) препаровальная игла; 9) микроскоп; 10) предметные и покровные стекла; 11) фарфоровые чашечки (2 шт.); 12) карандаш по стеклу; 113 кусочки фильтрованной бумаги.

Ход работы. Налить раствор нейтрального красного в две фарфоровые чашки, добавить в одну из них 1/10 объема 1М раствора КNO3, а в другую - 1/10 объема 0,7 М Са(NO3) (18 капель раствора краски и 2 капли раствора соответствующей соли). Сделать на чашках надписи карандашом по стеклу.

Поместить в растворы по три среза эпидермиса лука или по три листочка элодеи. Через 5 мин вынуть по одному срезу (или листочку), обсушить фильтрованной бумагой, поместить на предметное стекло в каплю 1М раствора сахарозы и накрыть покровным стеклом. То же самое сделать с объектами, пролежавшими в растворе краски в течение 10-15 мин. Рассмотреть плазмолизированные клетки в микроскоп и сравнить скорость проникновения нейтрального красного в вакуоли (по интенсивности окраски).

Сделать вывод о влиянии ионов на проницаемость цитоплазмы.

Контрольные вопросы:

1. Назовите основные соединения, входящие в состав растительной клетки.

2. Назовите основные реакции на белковые соединения.

3. С каким химическим соединением связано старения растительной клетки.

4. Чему равна сосущая сила клеток, если тургорное давление равно осмотическому?

5. У какого растения осмотическое давление выше: у растущего в тенистом месте или у растущего в степи?

6. Клетка с осмотическим давлением 5,0 атм. погружена в раствор с осмотическим давлением 7,0 атм. Что произошло с клеткой?

7. Клетка полностью насыщена водой. Осмотическое давление клеточного сока равно 6, атм. Чему равна сосущая сила и тургорное давление этой клетки?

8. После погружения растительной ткани в 10 % раствор сахарозы концентрация ее осталась без изменений. Как изменится концентрация 12 % раствора сахарозы, если в него погружена аналогичная растительная ткань?

9. Объяснить причины возникающего иногда массового растрескивания плодов (у огурца, дыни и др.), ягод и корнеплодов (у моркови, брюквы, свеклы и др.)?

10. Почему при перевозке на пароходах и баржах зерна, особенно бобовых культур, попадание даже сравнительно небольшого количества воды в трюм может привести к катастрофическим последствиям для этой баржи или парохода?

Тема: Фотосинтез и дыхание растений Цель работы: Рассмотреть CO2 газообмен растений. Познакомиться с методами определения фотосинтеза, дыхания. Показать роль ферментов в дыхательном процессе.

Задачи работы:

1. Определение концентрации хлорофиллов.

2. Химические и физические свойства хлорофиллов.

3. Хроматография пигментов.

4. Фотосинсибилизирующая роль хлорофиллов.

5. Сравнение интенсивности дыхания у разных растений.

6. Обнаружение ферментов, участвующих в процессе дыхания.

Задание: Определение интенсивности фотосинтеза, свойств и количества пигментов в различных растениях. Сравнение интенсивности дыхания у разных растений. Обнаружение ферментов, участвующих в процессе дыхания.

Требование к отчету: Результаты лабораторных работ должны быть оформлены в специальных тетрадях по следующему плану: 1. Название темы. 2. Название работы. 3 Оборудование, реактивы. 4. Ход работы. 5. Выводы на основании полученных результатов. Хроматограммы зарисовать.

Обеспечивающие средства: 1) свежие или сушеные листья растений (крапива, примула, аспидистра, плющ); 2) этиловый спирт; 3) бензин; 4) 20 % раствор КОН в капельнице; 5) 10% НСl в капельнице; 6) СаСО3; 7) уксуснокислый цинк; 8) кварцевый песок или толченое стекло; 9) ступка с пестиком (сухие); 10) воронка; 11) стеклянная палочка; 12) штатив с пробирками (5шт); 13) cтакан с водой; 14) пипетка; 15) ножницы; 16) скальпель; 17) спиртовка;

18) держалка для пробирок; 19) вазелин; 20) бумажный фильтр; 21) спички; 22) цветные карандаши.

Ход работы. Свежие или сушеные листья измельчить ножницами, отбросив крупные жилки и черешки, поместить в ступку, добавить на кончике ножа СаСО3 (для нейтрализации кислот клеточного сока) и немного чистого кварцевого песка или толченого стекла.

Тщательно растереть, приливая понемногу этиловый спирт, смазать носик ступки с наружной стороны вазелином и слить полученный темно-зеленый раствор по палочке в воронку с фильтром.

Налить полученную вытяжку по 2-3 мл в четыре пробирки и провести следующие опыты.

а) Разделение пигментов по Краусу. Добавить к спиртовой вытяжке пигментов несколько больший объем бензина и 2-3 капли воды (чтобы спирт не смешивался с бензином).

Закрыть пробирку большим пальцем, несколько раз сильно встряхнуть и дать отстояться.

Если разделение пигментов будет недостаточно четким (оба слоя окрашены в зеленый цвет), то необходимо прилить еще бензина и продолжать взбалтывание. Помутнение нижнего слоя (от избытка воды) можно устранить, добавляя немного спирта. Отметить окраску нижнего спиртового слоя и верхнего бензинового (сделать рисунок).

Сделать выводы о различной растворимости пигментов в спирте и бензине. При этом нужно учесть, что ксантофилл, будучи двухосновым спиртом, почти не растворим в бензине.

В отношении каротина правильный вывод можно будет сделать, сопоставив результаты данного опыта и следующего.

б) Омыление хлорофилла щелочью. К 2-3 мл спиртовой вытяжки пигментов добавить 4-5 капель 20 %-ного раствора щелочи и взболтать. Прилить в пробирку равный объем бензина, сильно встряхнуть и дать отстояться. Отметить окраску спиртового и бензинного слоев (зарисовать).

В выводах записать реакцию омыления хлорофилла, в результате которой происходит отщепление спиртов - метилового и фитола, а двухосновная кислота хлорофиллин дает соль:

Соли хлорофиллинов имеют зеленую окраску, но отличаются от хлорофилла нерастворимостью в бензине.

Указать, какие вещества растворены в спирте и какие в бензине, имея в виду, что желтые пигменты со щелочью не реагируют.

в) Получение феофитина и восстановление металлоорганической связи. Взять две пробирки со спиртовой вытяжкой пигментов и добавить в них по 2-3 капли 10%-ной соляной кислоты. Получается буровато оливковое вещество - феофитин - продукт замещения магния в молекуле хлорофилла двумя атомами водорода:

В одну из пробирок с феофитином внести на кончике ножа немного уксуснокислого цинка и довести раствор до кипения. Если окраска не измениться, добавить еще уксуснокислого цинка и продолжать нагревание. Отметить изменение окраски благодаря восстановлению металлорганической связи (атом цинка становится на то место, где раньше был магний).

Написать уравнение реакции.

Работа 14. Разделение пигментов методом хроматографии на бумаге Обеспечивающие средства: 1) свежие листья каких-либо растений; 2) ацетон; 3) петролейный эфир; 4) СаСО3; 5) кварцевый песок и толченое стекло; 6) полоска фильтрованной бумаги для хроматографии (“быстрой”) размером 1,5х15 см; 7) ступка с пестиком; 8) чистая сухая колба Бунзена с пробкой, в которую вставлен стеклянный фильтр; 9) стеклянная палочка; 10) насос Камовского; 11) вазелин; 12) стеклянные бюксы (2 шт); 13) стеклянный целиндр или большая пробирка высотой 20-25 см с хорошо подобранной корковой пробкой с проволочным крючком; 14) цветные карандаши.

Хроматографический метод разделения пигментов, впервые предложенный русским ученым М.С. Цветом, заключается в том, что раствор, содержащий смесь пигментов, пропускается через слой адсорбента. Разные пигменты, обладая неодинаковой растворимостью в данном растворителе и разной адсорбируемостью, передвигаются с неодинаковой скоростью и располагаются на адсорбенте в разных местах. Чем больше растворимость пигмента в растворителе и чем хуже он адсорбируется данным адсорбентом, тем быстрее он будет передвигаться и тем дальше будет располагаться зона этого пигмента.

В настоящее время наиболее распространена хроматография на бумаге.

Ход работы. Измельченные свежие листья поместить в ступку, добавить немного СаСО3 и кварцевого песка или толченого стекла и растереть, постепенно приливая ацетон (на 2г материала около 25 мл ацетона). Полученный раствор профильтровать через стеклянный фильтр в чистую сухую колбу Бунзена, отсасывая насосом (эту часть работы может делать дежурный, приготовляя вытяжку для всей группы).

Налить вытяжку в бюкс и погрузить в нее кончик полоски, вырезанной из фильтрованной бумаги. Через несколько секунд, когда вытяжка поднимется на бумаге на 1-1,5 см, высушить бумагу на воздухе и снова погрузить в раствор пигментов на несколько секунд. Эту операцию повторять 5-7 раз до тех пор, пока у верхней границы распространения пигментов на бумаге не образуется темно зеленая полоска. После этого погрузить кончик бумажной полоски на несколько секунд в чистый ацетон, чтобы все пигменты поднялись на 1-1,5 см.

Высушить полоску до полного исчезновения запаха ацетона, поместить ее в вертикальном положении в цилиндр, на дно которого налит петролейный эфир. Поскольку нужно подвесить на крючок так, чтобы в растворитель был погружен только неокрашенный конец и чтобы она не касалась стенок сосуда. В связи с тем, что пигменты разрушаются на свету, разделение следует проводить в темноте или при слабом освещении.

Через 10-15 мин растворитель поднимается на 10-12 см. При этом пигменты располагаются в следующем порядке: внизу хлорофилл b, над ним хлорофилл a, затем ксантофилл и каротин, поднимающийся вместе с фронтом растворителя (рис.8).

Зарисовать полученную хроматограму и сделать вывод о причинах разделения пигментов на бумаге.

Обеспечивающие средства: 1)концентрированная спиртовая или ацетоновая вытяжка пигментов зеленого листа; 2) раствор каротина (бензиновая вытяжка корнеплодной моркови); 3) раствор ксантофилла, полученный при разделении пигментов по Краусу; 4) спирт или ацетон; 5) спектроскоп; 6) настольная лампа; 7) чугунный штатив с двумя лапками; 8) штатив с пробирками (7 шт.); 9) пипетки градуированные на 5-10 мл (2 шт.); 10) кусок черной бумаги или черной материи; 11) цветные карандаши.

Основное свойство хлорофилла - его способность поглощать световую энергию, причем свет поглощается хлорофиллом избирательно. В этом можно убедиться, пропуская белый свет через раствор хлорофилла, а затем разлагать его при помощи призмы. Отдельные участки спектра окажутся поглощенными, и на их месте будут видны темные полосы. Полученный спектр называется спектром поглощения.

Сопоставляя спектры поглощения растворов разной концентрации (или одного и того же раствора, но при разной толщине слоя), можно установить степень поглощения отдельных лучей: чем слабее поглощается данный участок спектра, тем концентрированнее нужно взять раствор, чтобы добиться исчезновение этого участка в спектре поглощения. Наиболее сильно поглощаемые лучи можно определить по полосам в спектре поглощения очень разбавленного раствора, тогда как наименее поглощаемые лучи проходят даже через довольно концентрированный раствор.

Хлорофилл обладает и другим оптическим свойством - флюоресценцией, возникающей при поглощении света. Это явление объясняется переходом молекул хлорофилла из возбужденного в нормальное состояние. Флюоресценция - признак фотохимической активности хлорофилла.

Ход работы. I. Спектры поглощения пигментов. Направить спектроскоп на источник света. Отрегулировать ширину щели на конце трубы спектроскопа так, Чтобы спектр получился четкий и достаточно яркий (при слишком широкой щели спектр получается размытый, нечистый, при очень узкой щели освещенность спектра недостаточна).

Налить исследуемый раствор в пробирку и закрепить ее в лапке штатива перед щелью спектроскопа. Изучить спектры поглощения растворов хлорофилла разной концентрации, разбавляя вытяжку из зеленого листа в отношениях 1:1, 1:3, 1:5, 1:15. Для сравнения рассмотреть спектр бензиновой вытяжки из корнеплода моркови, содержащей каротин, и спиртовой раствор ксантофилла, полученный при разделении пигментов по Краусу.

Зарисовать спектры по форме, приведенной в таблице, причем поглощенные участки закрасить черным, а видимые участки - цветными карандашами.

Хлорофилла:

не разведенный раствор Каротина Ксантофилла II. Флюоресценция хлорофилла. Рассмотреть вытяжку пигментов в отраженном свете, для чего поместить пробирку на черном фоне у окна или электролампы и рассмотреть со стороны, откуда падает свет. Отметить окраску раствора и записать вывод о способности хлорофилла к флюоресценции.

Работа 16. Определение фотосенсибилизирующего действия хлорофилла Обеспечивающие средства: Спиртовая вытяжка хлорофилла, этиловый спирт, аскорбиновая кислота, метиловый красный, электролампа.



Pages:   || 2 |
 


Похожие работы:

«ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО ОБРАЗОВАНИЮ Сыктывкарский лесной институт – филиал государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования Санкт-Петербургская государственная лесотехническая академия имени С. М. Кирова ФЕВРАЛЬСКИЕ ЧТЕНИЯ Региональная научно-практическая конференция, посвященная 55-летию высшего профессионального лесного образования в Республике Коми Сыктывкар, Сыктывкарский лесной институт, 27–28 февраля 2007 г. СБОРНИК МАТЕРИАЛОВ Научное электронное издание...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК РОССИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ – МСХА имени К.А. ТИМИРЯЗЕВА _ ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ И ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ ВОСПРОИЗВОДСТВА ПЛОДОРОДИЯ ПОЧВ И УРОЖАЙНОСТЬ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ КУЛЬТУР Материалы Международной научно-практической конференции Москва Издательство РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева 2012 УДК 631.452 + 631.559 ББК 40.326 + 41.47 Т33 Теоретические и технологические основы...»

«Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь Учреждение образования Витебская ордена Знак Почета государственная академия ветеринарной медицины М. В. Базылев, Е. А. Лёвкин, В. В. Линьков ВЫПОЛНЕНИЕ КОНТРОЛЬНОЙ РАБОТЫ ПО ЭКОНОМИКЕ И ОРГАНИЗАЦИИ АПК Учебно-методическое пособие для студентов факультета заочного обучения по специальности 1 – 74 03 02 Ветеринарная медицина ВИТЕБСК УО ВГАВМ 2013 УДК 631.15:33 ББК 65.9(2)32 В 21 Рекомендовано к изданию редакционно-издательским...»

«Агрофизический научно-исследовательский институт Россельхозакадемии (ГНУ АФИ Россельхозакадемии) Сибирский физико-технический институт аграрных проблем Россельхозакадемии (ГНУ СибФТИ Россельхозакадемии) Учреждение Российской академии наук Центр междисциплинарных исследований по проблемам окружающей среды РАН (ИНЭНКО РАН) Российский Фонд Фундаментальных Исследований МАТЕРИАЛЫ ВСЕРОССИЙСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ (с международным участием) МАТЕМАТИЧЕСКИЕ МОДЕЛИ И ИНФОРМАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ В...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА Факультет электрификации и энергообеспечения АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ЭНЕРГЕТИКИ АПК Материалы III Международной научно-практической конференции САРАТОВ 2012 УДК 338.436.33:620.9 ББК 31:65.32 Актуальные проблемы энергетики АПК: Материалы III Международной научнопрактической...»

«УДК 338.436.33 ПРИБЫТКОВА НАТАЛЬЯ ВАСИЛЬЕВНА СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ИНВЕСТИЦИОННОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ В ВЕРТИКАЛЬНО-ИНТЕГРИРОВАННЫХ СТРУКТУРАХ (НА МАТЕРИАЛАХ ФПГ ЗОЛОТОЕ ЗЕРНО АЛТАЯ) 08.00.05 – экономика и управление народным хозяйством (управление инновациями и инвестиционной деятельностью) АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата экономических наук Барнаул 2007 Диссертация выполнена на кафедре маркетинга и предпринимательской деятельности АПК ФГОУ ВПО Алтайский...»

«Детский труд в аграрном секторе Казахстана Результаты исследования в Алматинской и Южно-Казахстанской областях ОТЧЕТ Международная Программа по Искоренению Детского Труда (ИПЕК) Группа технической поддержки по вопросам достойного труда и Бюро МОТ для стран Восточной Европы и Центральной Азии Авторское право © Международная организация труда 2013 Первое издание 2013 Публикации Международного бюро труда охраняются авторским правом в соответствии с Протоколом 2 Всемирной конвенции об авторском...»

«ISSN 0202-3628 РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК _ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ НАУЧНЫЙ ЦЕНТР РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ВСЕРОССИЙСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ РАСТЕНИЕВОДСТВА имени Н.И. ВАВИЛОВА (ГНЦ РФ ВИР) ТРУДЫ ПО ПРИКЛАДНОЙ БОТАНИКЕ, ГЕНЕТИКЕ И СЕЛЕКЦИИ, том 164 (основаны Р.Э. Регелем в 1908 г.) САНКТ-ПЕТЕРБУРГ 2007 BULLETIN OF APPLIED BOTANY, OF GENETICS AND PLANT BREEDING, vol. 164 (founded by Robert Regel in 1908) ST.-PETERSBURG РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ...»

«ЛЕКЦИИ ВЕДУЩИХ УЧЕНЫХ ДЛЯ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ ВСЕРОССИЙСКОЙ НАУЧНОЙ ШКОЛЫ ПО АНАЛИТИЧЕСКОЙ ХИМИИ Краснодар 2011 1 Содержание ПРОТОЧНОЕ СОРБЦИОННО-МАСС-СПЕКТРОМЕТРИЧЕСКОЕ С ИНДУКТИВНО СВЯЗАННОЙ ПЛАЗМОЙ ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭЛЕМЕНТОВ В РАСТВОРАХ М.А. Большов, В.К. Карандашев, Г.И. Цизин, Ю.А. Золотов ПЕРМАНЕНТНЫЕ ХИМИЧЕСКИЕ МОДИФИКАТОРЫ В ПРАКТИКЕ ЭЛЕКТРОТЕРМИЧЕСКОГО АТОМНО-АБСОРБЦИОННОГО СПЕКТРОСКОПИЧЕСКОГО АНАЛИЗА М.Ю. Бурылин МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ КОЛЛОИДНЫХ ЧАСТИЦ С НАНОМЕТРОВЫМ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ ГРОДНЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Перспективы развития высшей школы МАТЕРИАЛЫ III МЕЖДУНАРОДНОЙ НАУЧНО-МЕТОДИЧЕСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ Гродно 2010 УДК 378(06) ББК 74.58 П 26 Редакционная коллегия: В.К. Пестис (ответственный редактор), А.А. Дудук (зам. ответственного редактора), А.В. Свиридов, С.И. Юргель. Перспективы развития высшей школы: материалы III П26 Международной науч.-метод. конф. /...»

«Экологические проблемы Арктики и северных территорий Выпуск 14 СЕВЕРНЫЙ (АРКТИЧЕСКИЙ ) ФЕДЕРАЛЬНЫЙ УНИВЕРСИСТЕТ ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОБЛЕМЫ АРКТИКИ И СЕВЕРНЫХ ТЕРРИТОРИЙ Межвузовский сборник научных трудов Выпуск 14 Архангельск 2011 УДК 581.5+630*18 ББК 43+28.58 Редакционная коллегия: Бызова Н.М.- канд.геогр.наук, профессор Евдокимов В.Н.- канд. биол.наук, доцент Феклистов П.А. – доктор с.-х. наук, профессор Шаврина Е.В.- канд.биол.наук, доцент Ответственный редактор доктор сельскохозяйственных...»

«РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК УПРАВЛЕНИЕ СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЯЗАНСКОЙ ОБЛАСТИ ГОСУДАРСТВЕННОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ РЯЗАНСКИЙ НАУЧНОИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ И ПРОЕКТНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ АГРОПРОМЫШЛЕННОГО КОМПЛЕКСА РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК (ГУ Рязанский НИПТИ АПК Россельхозакадемии) ИННОВАЦИОННАЯ ТЕХНОЛОГИЯ ВЫРАЩИВАНИЯ ЯРОВОГО ЯЧМЕНЯ НА ПИВОВАРЕННЫЕ ЦЕЛИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СОВРЕМЕННЫХ И ПЕРСПЕКТИВНЫХ СОРТОВ Рязань, 2007 УДК: 633.162 321 631.58 (470.313)...»

«Министерство здравоохранения и социального развития Российской Федерации. Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Кемеровская государственная медицинская академия В.А. Громова, Ю.В. Захарова РУКОВОДСТВО ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ СТУДЕНТОВ ПО САНИТАРНОЙ МИКРОБИОЛОГИИ ВОДЫ, ПОЧВЫ, ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ ОРГАНИЗАЦИЙ Кемерово – 2010 1 УДК 579 (075.4) Громова В. А., Захарова Ю. В. Руководство для самостоятельной работы студентов по санитарной микробиологии...»

«ЕСМУХАНБЕТОВ ДАНИЯР НУРИДИНОВИЧ Продуктивно-биологические качества алтайских маралов в Заилийском Алатау (Северный Тянь-Шань) 06.02.09 – звероводство и охотоведение диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук Научный руководитель : д.б.н. В.О. Саловаров Иркутск, 2013 ВВЕДЕНИЕ 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.2....»

«ОТДЕЛЕНИЕ БИОЛОГИЧЕСКИХ НАУК РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК УЧРЕЖДЕНИЕ РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК УЧРЕЖДЕНИЕ РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ ИНСТИТУТ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИХ И НАУК ИНСТИТУТ МАТЕМАТИЧЕСКИХ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРОБЛЕМ ПОЧВОВЕДЕНИЯ РАН ПРОБЛЕМ БИОЛОГИИ РАН Российский фонд фундаментальных исследований Материалы Второй Национальной конференции с международным участием Математическое моделирование в экологии 23-27 мая 2011 г. г. Пущино УДК 57+51-7 ББК 28в6 М34 Ответственный редактор профессор, доктор биологических...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО РЫБОЛОВСТВУ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ МУРМАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ Кафедра горного дела УПРАВЛЕНИЕ СОСТОЯНИЕМ ГОРНОГО МАССИВА Методические указания и контрольные задания для студентов заочной формы обучения специальности 130404 Подземная разработка месторождений полезных ископаемых Апатиты 2007 2 УДК 622.274 ББК 33.15 У 66...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО РЫБОЛОВСТВУ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ “МУРМАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ” кафедра горного дела ПРОЕКТИРОВАНИЕ КАРЬЕРОВ Методические указания и задания для контрольных работ и курсового проектирования для студентов заочного обучения специальности 130403 Открытые горные работы Мурманск 2006 2 УДК 622.3 ББК 33.3 П 79 Составители – Сергей...»

«АССОЦИАЦИЯ СПЕЦИАЛИСТОВ ПО КЛЕТОЧНЫМ КУЛЬТУРАМ ИНСТИТУТ ЦИТОЛОГИИ РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК ISSN 2077 - 6055 КЛЕТОЧНЫЕ КУЛЬТУРЫ ИНФОРМАЦИОННЫЙ БЮЛЛЕТЕНЬ ВЫПУСК 30 CАНКТ-ПЕТЕРБУРГ 2014 -2УДК 576.3, 576.4, 576.5, 576.8.097, М-54 ISSN 2077-6055 Клеточные культуры. Информационный бюллетень. Выпуск 30. Отв. ред. М.С. Богданова. — СПб.: Изд-во Политехн. ун-та, 2014. — 99 с. Настоящий выпуск посвящен памяти Георгия Петровича Пинаева — выдающегося ученого, доктора биологических наук, профессора,...»

«Федеральное агентство по образованию Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования ГОРНО-АЛТАЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Кафедра геоэкологии и природопользования ОБЩАЯ ЭКОЛОГИЯ Учебно-методический комплекс Для студентов, обучающихся по специальности 020802 Природопользование Горно-Алтайск РИО Горно-Алтайского госуниверситета 2009 Печатается по решению методического совета Горно-Алтайского госуниверситета ББК – 28.080 O 28 Общая экология :...»

«I Содержание НОВОСТИ МЕСЯЦА Пищевая промышленность (Москва), 16.10.2013 1 Минфин прогнозирует снижение финансирования АПК РФ ИТОГИ РАБОТЫ ПРЕДПРИЯТИЙ ПИЩЕВОЙ И ПЕРЕРАБАТЫВАЮЩЕЙ ПРОМЫШЛЕННОСТИ РОССИИ Пищевая промышленность (Москва), 16.10.2013 7 за январь-июль 2013 г. ПОВЫШЕНИЕ КОНКУРЕНТОСПОСОБНОСТИ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОГО СЫРЬЯ И ПИЩЕВОЙ ПРОДУКЦИИ - КЛЮЧ К УСПЕХУ РОСТА ПРОИЗВОДСТВА ПИЩЕВОЙ ПРОМЫШЛЕННОСТИ РОССИИ В УСЛОВИЯХ ВТО Пищевая промышленность (Москва), 16.10.2013 7 УДК 631.1 - 338.43...»






 
© 2013 www.seluk.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.